Fluorescência

Fluorescência é uma das duas formas de fotoluminescência, a emissão de luz por uma substância que absorveu luz ou outra radiação eletromagnética. Quando expostas à radiação ultravioleta, muitas substâncias brilham por fluorescência, emitindo luz visível colorida. A cor da luz emitida depende da composição química da substância. Em geral, materiais fluorescentes deixam de brilhar quase imediatamente quando a fonte de radiação é interrompida. Isso os diferencia do outro tipo de emissão luminosa, a fosforescência. Materiais fosforescentes continuam emitindo luz por algum tempo após a interrupção da radiação. Essa diferença de duração resulta de efeitos do spin quântico.

A fluorescência ocorre quando um fóton da radiação incidente é absorvido por uma molécula, excitando-a para um nível de energia mais alto, e depois há emissão de luz quando a molécula retorna a um estado de menor energia. A luz emitida pode ter comprimento de onda maior e, por isso, energia de fóton menor que a radiação absorvida. A radiação absorvida pode, por exemplo, estar na região ultravioleta do espectro eletromagnético, invisível ao olho humano, enquanto a luz emitida está na região visível. Isso dá à substância fluorescente uma cor característica, percebida com maior clareza sob luz ultravioleta, quando ela parece brilhar no escuro. Qualquer luz de comprimento de onda mais curto, porém, pode fazer um material fluorescer em um comprimento de onda mais longo. Materiais fluorescentes também podem ser excitados por certos comprimentos de onda da luz visível, o que pode mascarar o brilho, embora suas cores possam parecer vivas e intensificadas. Outros materiais fluorescentes emitem luz nas regiões infravermelha ou mesmo ultravioleta do espectro.

A fluorescência tem aplicações práticas em mineralogia, gemologia, medicina, sensores químicos, como na espectroscopia de fluorescência, marcação fluorescente, corantes, detectores biológicos, detecção de raios cósmicos, displays fluorescentes a vácuo e tubos de raios catódicos. Sua aplicação cotidiana mais comum está nas lâmpadas de descarga de gás fluorescentes e nas lâmpadas LED, nas quais revestimentos fluorescentes convertem luz ultravioleta ou azul em comprimentos de onda maiores, produzindo luz branca que pode parecer indistinguível da emitida pela tradicional e energeticamente ineficiente lâmpada incandescente.

A fluorescência também ocorre com frequência na natureza, em alguns minerais e em muitas formas biológicas de todos os reinos da vida. Neste último caso, costuma ser chamada de biofluorescência, indicando que o fluoróforo faz parte de um organismo vivo ou deriva dele, em vez de ser um corante ou uma tintura inorgânica. Como a fluorescência resulta de uma propriedade química específica que muitas vezes pode ser sintetizada artificialmente, em geral basta classificar a própria substância como fluorescente.

História

A fluorescência foi observada muito antes de receber esse nome e de ser compreendida.^[1] Uma observação antiga de fluorescência era conhecida pelos astecas^[1] e foi relatada em 1560 por Bernardino de Sahagún e em 1565 por Nicolás Monardes na infusão chamada lignum nephriticum, expressão em latim para "madeira do rim". Ela era obtida da madeira de duas espécies de árvores, Pterocarpus indicus e Eysenhardtia polystachya.^[2]^[3]^[4] O composto químico responsável por essa fluorescência é a matlaline, produto da oxidação de um dos flavonoides encontrados nessa madeira.^[2]

Em 1819, E. D. Clarke^[5] e, em 1822, René Just Haüy^[6] registraram variedades de fluorita cuja cor variava conforme a luz fosse refletida ou, aparentemente, transmitida. Haüy interpretou incorretamente o efeito como um espalhamento de luz semelhante à opalescência.^[1]^{(fig. 5)} Em 1833, David Brewster relatou um efeito semelhante na clorofila, que também considerou uma forma de opalescência.^[7] John Herschel estudou a quinina em 1845^[8]^[9] e chegou a outra conclusão incorreta.^[1]

Em 1842, A. E. Becquerel observou que o sulfeto de cálcio emitia luz depois de ser exposto à radiação ultravioleta solar, tornando-se o primeiro a afirmar que a luz emitida tinha comprimento de onda maior que o da luz incidente. Sua observação de fotoluminescência era semelhante à relatada dez anos depois por Stokes, que observou a fluorescência de uma solução de quinina, mas o fenômeno que Becquerel registrou no sulfeto de cálcio é chamado de fosforescência.^[1]

Em seu artigo de 1852 sobre a "refrangibilidade", isto é, a mudança do comprimento de onda da luz, George Gabriel Stokes tratou da capacidade da fluorita, do vidro de urânio e de muitas outras substâncias de transformar luz invisível além da extremidade violeta do espectro visível em luz visível. Ele deu ao fenômeno o nome de fluorescência.^[1]

"Estou quase inclinado a cunhar uma palavra e chamar a aparência de fluorescência, de fluorita [fluor-spar], assim como o termo análogo opalescência deriva do nome de um mineral."^[10]^{:479, nota de rodapé}

Nem Becquerel nem Stokes compreenderam um aspecto essencial da fotoluminescência, sua diferença em relação à incandescência, que é a emissão de luz por material aquecido. Para distingui-la da incandescência, no fim do século XIX Gustav Wiedemann propôs o termo luminescência para qualquer emissão luminosa mais intensa do que a esperada para a temperatura da fonte.^[1]

Avanços na espectroscopia e na eletrônica quântica entre as décadas de 1950 e 1970 permitiram distinguir os três mecanismos que produzem a luz e delimitar os tempos típicos em que a emissão decai depois da absorção. Essa distinção tornou-se necessária em aplicações como os lasers, que exigiam os tempos de decaimento mais rápidos, geralmente na escala dos nanossegundos, bilionésimos de segundo. Na física, esse primeiro mecanismo recebeu os nomes de "fluorescência" ou "emissão singleto" e ocorre em muitos meios de laser, como o rubi. Descobriu-se que outros materiais fluorescentes tinham tempos de decaimento muito mais longos porque alguns átomos mudavam seu spin para um estado tripleto. Eles brilhavam intensamente por fluorescência durante a excitação, mas produziam um brilho residual mais fraco por pouco tempo depois que a excitação era retirada. Esse processo recebeu os nomes de "fosforescência" ou "fosforescência tripleto". Os tempos típicos de decaimento variavam de alguns microssegundos a um segundo, ainda rápidos o bastante para serem chamados coloquialmente de fluorescentes. Exemplos comuns são lâmpadas fluorescentes, corantes orgânicos e a própria fluorita. Emissores mais duradouros, chamados de substâncias que brilham no escuro, variavam de um segundo a muitas horas. Esse mecanismo recebeu o nome de fosforescência persistente ou luminescência persistente, distinguindo-se dos outros dois mecanismos.^[11]^:1–25

Princípios físicos

Mecanismo

Quando uma molécula, átomo ou nanoestrutura excitada emite um fóton e o estado de menor energia, geralmente o estado fundamental, tem a mesma multiplicidade de spin eletrônico que o estado excitado, o processo é chamado de fluorescência. Quando os estados inicial e final têm multiplicidades de spin diferentes, o fenômeno é chamado de fosforescência.^[12]

Quando uma molécula em seu estado fundamental, chamado S₀, é fotoexcitada, ela pode chegar a um dentre vários estados eletrônicos excitados, S₁, S₂, S₃ e assim por diante. Ela pode ocupar diferentes estados vibracionais dentro de um estado eletrônico. Esses estados vibracionais são povoados proporcionalmente à sua sobreposição com o estado fundamental, conforme o princípio de Franck-Condon.^[13]^:31 Em geral, esses estados vibracionais excitados decaem rapidamente para o estado vibracional fundamental do primeiro estado eletrônico excitado S₁, seguido por uma transição radiativa para o estado fundamental ou para estados vibracionais próximos ao estado fundamental. Essa transição é chamada de fluorescência. Todos esses estados são estados singletos.^[14]^:225

Outra via de desexcitação é o cruzamento intersistemas de S₁ para um estado tripleto T₁. O decaimento de T₁ para S₀ costuma ser mais lento e menos intenso e recebe o nome de fosforescência.^[14]^:225

A absorção de um fóton de energia $h\nu _{ex}$ produz um estado excitado com a mesma multiplicidade de spin do estado fundamental, em geral um singleto, S_n com n > 0. Em solução, estados com n > 1 relaxam rapidamente até o nível vibracional mais baixo do primeiro estado excitado, S₁, transferindo energia para as moléculas do solvente por processos não radiativos. Entre eles estão a conversão interna, seguida pela relaxação vibracional, na qual a energia é dissipada como calor. Por isso, a energia da fluorescência costuma ser menor que a energia de fotoexcitação.^[13]^:38

O estado excitado S₁ pode relaxar por outros mecanismos que não envolvem emissão de luz. Esses processos não radiativos competem com a emissão fluorescente e reduzem sua eficiência.^[13] Entre eles estão a conversão interna, o cruzamento intersistemas para o estado tripleto e a transferência de energia para outra molécula. Um exemplo desta última é a transferência de energia por ressonância de Förster. A relaxação de um estado excitado também pode ocorrer por supressão colisional, processo no qual uma molécula supressora colide com a molécula fluorescente durante o tempo de vida do estado excitado. O oxigênio molecular, O₂, é um supressor extremamente eficiente da fluorescência por causa de seu estado fundamental tripleto incomum.

Rendimento quântico

O rendimento quântico da fluorescência mede a eficiência do processo fluorescente. Ele é definido como a razão entre o número de fótons emitidos e o número de fótons absorvidos.^[15]^:10^[13]

\Phi ={\frac {\text{Número de fótons emitidos}}{\text{Número de fótons absorvidos}}}

O maior rendimento quântico possível para a fluorescência é 1,0, ou 100%. Cada fóton absorvido resulta em um fóton emitido. Compostos com rendimento quântico de 0,10 ainda são considerados bastante fluorescentes. Outra forma de definir o rendimento quântico da fluorescência usa a taxa de decaimento do estado excitado:

\Phi ={\frac {{k}_{f}}{\sum _{i}{k}_{i}}}

onde ${k}_{f}$ é a constante de taxa da emissão espontânea de radiação e

\sum _{i}{k}_{i}

é a soma de todas as taxas de decaimento do estado excitado. As demais taxas são produzidas por mecanismos diferentes da emissão de fótons e, por isso, costumam ser chamadas de "taxas não radiativas". Entre elas estão:

supressão colisional dinâmica
interação dipolo-dipolo de campo próximo, ou transferência de energia por ressonância
conversão interna
cruzamento intersistemas

Se a taxa de qualquer uma dessas vias mudar, o tempo de vida do estado excitado e o rendimento quântico da fluorescência também serão alterados.

Os rendimentos quânticos de fluorescência são medidos por comparação com um padrão.^[16] O sulfato de quinina em solução de ácido sulfúrico foi considerado o padrão de fluorescência mais comum,^[17] mas um estudo mostrou que o rendimento quântico de fluorescência dessa solução é fortemente afetado pela temperatura e que ela não deve mais ser usada como solução-padrão. A quinina em ácido perclórico 0,1 M, com Φ = 0,60, não apresenta dependência da temperatura até 45 °C e pode ser usada como solução-padrão confiável.^[18]

Tempo de vida

O tempo de vida da fluorescência é o tempo médio que a molécula permanece em seu estado excitado antes de emitir um fóton. A fluorescência normalmente segue cinética de primeira ordem:

\left[S_{1}\right]=\left[S_{1}\right]_{0}e^{-\Gamma t}

onde $\left[S_{1}\right]$ é a concentração de moléculas no estado excitado no instante $t$ , $\left[S_{1}\right]_{0}$ é a concentração inicial e $\Gamma$ é a taxa de decaimento ou o inverso do tempo de vida da fluorescência. Trata-se de um caso de decaimento exponencial. Processos radiativos e não radiativos podem despovoar o estado excitado. Nesse caso, a taxa total de decaimento é a soma de todas as taxas:

\Gamma _{tot}=\Gamma _{rad}+\Gamma _{nrad}

onde $\Gamma _{tot}$ é a taxa total de decaimento, $\Gamma _{rad}$ a taxa de decaimento radiativo e $\Gamma _{nrad}$ a taxa de decaimento não radiativo. O comportamento é semelhante ao de uma reação química de primeira ordem na qual a constante de velocidade é a soma de todas as taxas, um modelo cinético em paralelo. Se a taxa de emissão espontânea ou qualquer outra taxa for alta, o tempo de vida será curto. Em compostos fluorescentes de uso comum, os tempos típicos de decaimento do estado excitado para emissões de fótons com energias do ultravioleta ao infravermelho próximo ficam entre 0,5 e 20 nanossegundos. O tempo de vida da fluorescência é um parâmetro usado em aplicações como a transferência de energia por ressonância de Förster e a microscopia de imagem por tempo de vida de fluorescência.

Diagrama de Jablonski

O diagrama de Jablonski reúne a maior parte dos mecanismos de relaxação de moléculas em estado excitado. O diagrama ao lado mostra como a fluorescência ocorre pela relaxação de certos elétrons excitados de uma molécula.^[19]

Anisotropia de fluorescência

Fluoróforos têm maior probabilidade de ser excitados por fótons quando o momento de transição do fluoróforo está paralelo ao vetor elétrico do fóton.^[15]^:12–13 A polarização da luz emitida também depende do momento de transição, que por sua vez depende da orientação física da molécula do fluoróforo. Para fluoróforos em solução, a intensidade e a polarização da luz emitida dependem da difusão rotacional. Medidas de anisotropia podem ser usadas para investigar a liberdade de movimento de uma molécula fluorescente em determinado ambiente.

A anisotropia de fluorescência pode ser definida quantitativamente como

r={I_{\parallel }-I_{\perp } \over I_{\parallel }+2I_{\perp }}

onde $I_{\parallel }$ é a intensidade emitida paralelamente à polarização da luz de excitação e $I_{\perp }$ é a intensidade emitida perpendicularmente à polarização da luz de excitação.^[13]

A anisotropia independe da intensidade da luz absorvida ou emitida. Como é uma propriedade da luz, o fotobranqueamento do corante não afeta seu valor enquanto o sinal puder ser detectado.

Fluorescência

Pigmentos fortemente fluorescentes costumam ter uma aparência incomum, chamada coloquialmente de "cor neon" e, originalmente, de "day-glo" no fim da década de 1960 e início da década de 1970. Hermann von Helmholtz chamou o fenômeno de "Farbenglut", e Ralph M. Evans usou o termo "fluorence". Em geral, considera-se que ele esteja relacionado ao alto brilho da cor em comparação com o que teria se fosse um componente da luz branca. A fluorescência desloca a energia da iluminação incidente de comprimentos de onda menores para maiores, como do azul para o amarelo, e pode fazer a cor fluorescente parecer mais brilhante e mais saturada do que seria possível apenas por reflexão.^[20]

Regras

Há algumas regras gerais de caráter prático para a fluorescência. Todas têm exceções, mas são úteis para compreendê-la. Elas não se aplicam necessariamente à absorção de dois fótons.

Regra de Kasha

A regra de Kasha estabelece que a luminescência, seja fluorescência ou fosforescência, de uma molécula é emitida somente a partir do estado excitado mais baixo de determinada multiplicidade.^[21] A regra de Vavilov, extensão lógica da regra de Kasha e por isso chamada de regra de Kasha-Vavilov, estabelece que o rendimento quântico da luminescência independe do comprimento de onda da radiação de excitação e é proporcional à absorbância no comprimento de onda excitado.^[22] A regra de Kasha nem sempre se aplica e é violada por moléculas simples, como o azuleno.^[23] Uma formulação um pouco mais confiável, ainda com exceções, é que o espectro de fluorescência depende muito pouco do comprimento de onda da radiação de excitação.^[24]

Regra da imagem espelhada

Para muitos fluoróforos, o espectro de absorção é uma imagem espelhada do espectro de emissão.^[15]^:6–8 Isso é chamado de regra da imagem espelhada e está relacionado ao princípio de Franck-Condon, segundo o qual as transições eletrônicas são verticais, isto é, a energia muda sem alteração da distância, o que pode ser representado por uma linha vertical no diagrama de Jablonski. Isso significa que o núcleo não se move e que os níveis vibracionais do estado excitado se assemelham aos níveis vibracionais do estado fundamental.

Deslocamento de Stokes

Em geral, a luz fluorescente emitida tem comprimento de onda maior e energia menor que a luz absorvida.^[15]^:6–7 Esse fenômeno, chamado deslocamento de Stokes, resulta da perda de energia entre a absorção de um fóton e a emissão de um novo. As causas e a magnitude do deslocamento de Stokes dependem do fluoróforo e de seu ambiente. Uma causa comum é o decaimento não radiativo até o nível de energia vibracional mais baixo do estado excitado. Outro fator é que a emissão fluorescente deixa com frequência o fluoróforo em um nível vibracional mais alto do estado fundamental.

Na natureza

Há muitos compostos naturais que apresentam fluorescência e têm aplicações distintas. Alguns animais de águas profundas, como peixes da família Chlorophthalmidae, têm estruturas fluorescentes.

Fluorescência

Quando a fluorescência ocorre em um organismo vivo, às vezes é chamada de biofluorescência. A fluorescência é distinta da bioluminescência e da biofosforescência.^[25] Os sapinhos-pingo-de-ouro que vivem na Mata Atlântica brasileira são fluorescentes.^[26]

Bioluminescência

A bioluminescência difere da fluorescência porque é a produção natural de luz por reações químicas dentro de um organismo, enquanto a fluorescência é a absorção e a reemissão de luz do ambiente.^[25] Vaga-lumes e peixes-pescadores são dois exemplos de organismos bioluminescentes.^[27] Alguns organismos são bioluminescentes e fluorescentes, como a pena-do-mar Renilla reniformis, na qual a bioluminescência fornece a luz que provoca a fluorescência.^[28]

Fosforescência

A fosforescência se assemelha à fluorescência por depender de comprimentos de onda de luz que fornecem energia de excitação. A diferença está na estabilidade relativa da molécula energizada. Na fosforescência, ao contrário da fluorescência, a molécula energizada é metaestável e continua emitindo luz depois que a fonte de excitação é retirada, produzindo o chamado brilho no escuro.^[25] Adesivos que brilham no escuro, por exemplo, são fosforescentes.^[29] A biofosforescência em organismos vivos é extremamente rara e foi registrada em apenas alguns milípedes.^[30]

Mecanismos

Cromatóforos epidérmicos

Células pigmentares que apresentam fluorescência são chamadas de cromatóforos fluorescentes e têm funcionamento somático semelhante ao dos cromatóforos comuns. Essas células são dendríticas e contêm pigmentos chamados fluorossomos. Os pigmentos contêm proteínas fluorescentes ativadas por íons K⁺, ou potássio. O movimento, a agregação e a dispersão desses pigmentos dentro do cromatóforo fluorescente produzem padrões direcionados de fluorescência.^[31]^[32] As células fluorescentes são inervadas da mesma forma que outros cromatóforos, como os melanóforos, células pigmentares que contêm melanina. A formação de padrões fluorescentes de curto prazo e sua sinalização são controladas pelo sistema nervoso.^[31] Cromatóforos fluorescentes podem ser encontrados na pele, por exemplo em peixes, logo abaixo da epiderme e entre outros cromatóforos.

Células fluorescentes epidérmicas de peixes também respondem aos estímulos hormonais de α-MSH e MCH de modo semelhante aos melanóforos. Isso sugere que as células fluorescentes podem apresentar mudanças de cor ao longo do dia em associação com seu ritmo circadiano.^[33] Peixes também podem responder ao cortisol em respostas ao estresse provocadas por estímulos ambientais, como a interação com um predador ou a participação em um ritual de acasalamento.^[31]

Filogenética

Origens evolutivas

A fluorescência ocorre amplamente na árvore da vida e foi estudada com maior detalhe em cnidários e peixes. O fenômeno parece ter evoluído repetidas vezes em diferentes táxons, entre eles Anguilliformes, que reúne as enguias, Gobioidei, que reúne góbios e peixes-cardeais, e Tetraodontiformes, que reúne peixes-gatilho, além de outros táxons tratados mais adiante. Mesmo dentro de um ecossistema, a fluorescência varia bastante no genótipo e no fenótipo quanto aos comprimentos de onda emitidos, aos padrões apresentados e à intensidade. Em geral, espécies que dependem da camuflagem têm a maior diversidade de fluorescência, possivelmente porque a camuflagem é um de seus usos.^[34]

Uma hipótese propõe que a GFP e proteínas semelhantes à GFP tenham surgido como doadoras de elétrons ativadas pela luz. Esses elétrons seriam usados em reações que exigem energia luminosa. Funções de proteínas fluorescentes, como proteção contra a luz solar, conversão de luz em outros comprimentos de onda ou sinalização, teriam surgido depois.^[35]

Funções adaptativas

Sabe-se relativamente pouco sobre a função biológica da fluorescência e das proteínas fluorescentes.^[35] Entre as funções propostas estão sinalização e comunicação, acasalamento, atração de presas, camuflagem, proteção ultravioleta, ação antioxidante, fotoaclimatação, regulação de dinoflagelados e processos ligados à saúde de corais.^[36]

Aquática

A água absorve luz de comprimentos de onda longos, de modo que uma parcela menor dessa luz é refletida de volta aos olhos. Por isso, as cores quentes do espectro visível ficam menos vivas à medida que a profundidade aumenta. A água espalha a luz de comprimentos de onda curtos acima do violeta, fazendo com que as cores frias dominem o campo visual da zona fótica. A intensidade luminosa diminui dez vezes a cada 75 m de profundidade. A 75 m, a luz tem 10% da intensidade da superfície e, a 150 m, apenas 1%. Como a água filtra os comprimentos de onda e a intensidade da luz que alcança certas profundidades, proteínas diferentes, conforme os comprimentos de onda e intensidades que conseguem absorver, adaptam-se melhor a profundidades diferentes. Em teoria, os olhos de alguns peixes conseguem detectar luz a até 1.000 m. Nessas profundidades da zona afótica, as únicas fontes de luz são os próprios organismos, que a produzem por reações químicas no processo chamado bioluminescência.

A fluorescência pode ser definida de modo simples como a absorção de radiação eletromagnética em um comprimento de onda e sua reemissão em outro comprimento de onda de energia menor.^[34] Qualquer tipo de fluorescência depende, por isso, da presença de fontes externas de luz. A fluorescência biologicamente funcional ocorre na zona fótica, onde há luz suficiente para produzi-la e também para que outros organismos a detectem.^[37] O campo visual da zona fótica é naturalmente azul, e as cores da fluorescência podem ser percebidas como vermelhos, laranjas, amarelos e verdes intensos. Verde é a cor mais comum no espectro marinho, seguida de amarelo, laranja e vermelho. A fluorescência também pode ocorrer em organismos da zona afótica como subproduto da bioluminescência do próprio organismo. Em alguns casos, ela é apenas consequência da bioquímica dos tecidos e não tem função biológica. A função adaptativa de certos casos de fluorescência na zona afótica do oceano profundo ainda é objeto de pesquisa.^[38]

Zona fótica

Peixes

Peixes ósseos de águas rasas em geral têm boa visão de cores por viverem em ambientes coloridos. Nesses peixes, a fluorescência vermelha, laranja e verde provavelmente é usada na comunicação com coespecíficos, sobretudo diante da grande variação fenotípica do fenômeno.^[34]

Muitos peixes fluorescentes, como tubarões, peixes-lagarto, peixes-escorpião, bodiões e peixes achatados, também têm filtros intraoculares amarelos.^[39] Esses filtros, situados no cristalino e na córnea de certos peixes, funcionam como filtros passa-altas. Eles permitem que as espécies visualizem e potencialmente usem a fluorescência, aumentando o contraste visual e tornando perceptíveis padrões que não são vistos por peixes e predadores sem essa especialização.^[34] Peixes com os filtros intraoculares amarelos necessários para enxergar fluorescência podem usar sinais luminosos de outros indivíduos. Padrões fluorescentes eram particularmente marcantes em peixes de camuflagem críptica e elaborada. Muitas dessas linhagens também têm filtros intraoculares amarelos passa-altas que podem permitir a percepção desses padrões.^[39]

Outro uso adaptativo da fluorescência é produzir luz laranja e vermelha a partir da luz azul ambiente da zona fótica, auxiliando a visão. A luz vermelha só pode ser vista a distâncias curtas devido à atenuação de seus comprimentos de onda pela água.^[40] Muitas espécies fluorescentes são pequenas, vivem em grupos ou são bentônicas ou afóticas, e apresentam padrões conspícuos. Esses padrões são formados por tecido fluorescente e ficam visíveis para outros indivíduos da espécie, embora não apareçam em outras faixas do espectro visual. Os padrões fluorescentes intraespecíficos também coincidem com formas de sinalização dentro da espécie. Anéis oculares podem informar a direção do olhar de um indivíduo, enquanto padrões nas nadadeiras podem informar a direção de seu movimento.^[40] Há indícios de que essa fluorescência vermelha seja usada para comunicação privada entre indivíduos da mesma espécie.^[31]^[34]^[40] Como a luz azul predomina nas profundezas do oceano, a luz vermelha e os comprimentos de onda ainda maiores se tornam pouco discerníveis, e muitos peixes predadores de recifes têm pouca ou nenhuma sensibilidade a eles. Peixes como certos bodiões que desenvolveram sensibilidade visual a comprimentos de onda maiores conseguem exibir sinais fluorescentes vermelhos de alto contraste contra o ambiente azul. Esses sinais ficam visíveis a coespecíficos a curta distância e relativamente invisíveis para peixes comuns com baixa sensibilidade aos comprimentos de onda longos. A fluorescência pode, dessa forma, ser usada para sinalização adaptativa e comunicação intraespecífica em peixes de recife.^[40]^[41]

Também foi proposto que tecidos fluorescentes ao redor dos olhos convertam a luz azul da zona fótica ou a bioluminescência verde da zona afótica em luz vermelha, auxiliando a visão.^[40]

Tubarões

Um novo fluoróforo foi encontrado em duas espécies de tubarões e atribuído a um grupo até então não caracterizado de pequenos metabólitos bromados de triptofano-quinurenina.^[42]

Corais

A fluorescência pode desempenhar diferentes funções em corais. Proteínas fluorescentes de corais podem participar da fotossíntese ao converter comprimentos de onda que suas algas simbióticas não aproveitariam em comprimentos de onda nos quais elas conseguem realizar fotossíntese.^[43] A quantidade dessas proteínas também pode variar com a disponibilidade de luz como parte da fotoaclimatação.^[44] Elas ainda podem ter ação antioxidante ao eliminar radicais de oxigênio produzidos pela fotossíntese.^[45] Ao modular a fotossíntese, proteínas fluorescentes também podem regular a atividade das algas fotossintéticas simbiontes dos corais.^[46]

Cefalópodes

Alloteuthis subulata e Loligo vulgaris, duas espécies de lulas quase transparentes, têm pontos fluorescentes acima dos olhos. Esses pontos refletem a luz incidente e podem ser usados na camuflagem e na sinalização entre lulas durante a formação de cardumes.^[47]

Águas-vivas

Outro exemplo de fluorescência marinha muito estudado é o hidrozoário Aequorea victoria. Essa água-viva vive na zona fótica da costa oeste da América do Norte e foi identificada por Osamu Shimomura como portadora da proteína verde fluorescente, ou GFP. O gene dessas proteínas verdes fluorescentes foi isolado e é amplamente usado em estudos genéticos para indicar a expressão de outros genes.^[48]

Tamarutacas

Algumas espécies de tamarutacas, crustáceos estomatópodes, entre elas Lysiosquillina glabriuscula, têm marcas fluorescentes amarelas ao longo das escamas antenais e da carapaça. Os machos exibem essas marcas em demonstrações de ameaça a predadores e outros machos. Durante a exibição, elevam a cabeça e o tórax, abrem os apêndices de ataque e outros maxilípedes e estendem lateralmente as escamas antenais ovais e proeminentes. Isso faz o animal parecer maior e realça as marcas fluorescentes amarelas. À medida que a profundidade aumenta, a fluorescência das tamarutacas passa a responder por uma fração maior da luz visível disponível. Durante o acasalamento, elas fluorescem ativamente, e o comprimento de onda dessa fluorescência corresponde aos comprimentos de onda detectados pelos pigmentos de seus olhos.^[49]

Zona afótica

Sifonóforos

Siphonophorae é uma ordem de animais marinhos do filo Hydrozoa formada por zooides especializados do tipo medusoide e pólipo. Alguns sifonóforos, entre eles o gênero Erenna, vivem na zona afótica entre 1.600 m e 2.300 m de profundidade e apresentam fluorescência amarela a vermelha nos fotóforos de suas tentilas, estruturas semelhantes a tentáculos. Essa fluorescência é um subproduto da bioluminescência dos mesmos fotóforos. Os sifonóforos a exibem em um padrão intermitente usado como isca para atrair presas.^[50]

Peixes-dragão

O peixe-dragão predador de águas profundas Malacosteus niger, o gênero próximo Aristostomias e a espécie Pachystomias microdon usam pigmentos acessórios fluorescentes vermelhos para converter a luz azul de sua própria bioluminescência em luz vermelha emitida por fotóforos suborbitais. Essa luminescência vermelha é invisível para outros animais, permitindo que esses peixes tenham iluminação adicional nas profundezas escuras do oceano sem atrair ou sinalizar sua presença a predadores.^[51]

Terrestre

Anfíbios

A fluorescência é comum entre anfíbios e foi registrada em famílias de rãs e sapos, salamandras e cecílias, embora sua intensidade varie muito.^[52]

A perereca-pintada Hypsiboas punctatus, amplamente distribuída na América do Sul, foi descoberta por acaso em 2017 como o primeiro anfíbio fluorescente conhecido. A fluorescência foi atribuída a um novo composto encontrado na linfa e nas glândulas da pele.^[53] O principal composto fluorescente é Hyloin-L1, que produz um brilho azul-esverdeado quando exposto à luz violeta ou ultravioleta. Os pesquisadores que fizeram a descoberta propuseram que a fluorescência pudesse ser usada na comunicação e levantaram a possibilidade de o fenômeno ser relativamente comum entre rãs.^[54] Poucos meses depois, a fluorescência foi encontrada na espécie próxima Hypsiboas atlanticus. Como está ligada a secreções de glândulas da pele, esses animais também podem deixar marcas fluorescentes nas superfícies por onde passaram.^[55]

Em 2019, outros dois anuros do sudeste do Brasil, o pequeno Brachycephalus ephippium e B. pitanga, foram encontrados com esqueletos naturalmente fluorescentes, visíveis através da pele quando expostos à luz ultravioleta.^[56]^[57] Inicialmente se propôs que a fluorescência complementasse sua coloração aposemática, pois são tóxicos, ou que estivesse ligada à escolha de parceiros, por reconhecimento da espécie ou avaliação da aptidão de um parceiro potencial.^[56] Estudos posteriores apontaram que a primeira hipótese é improvável, pois tentativas de predação sobre esses animais parecem não ser afetadas pela presença ou ausência de fluorescência.^[58]

Em 2020, confirmou-se que a fluorescência verde ou amarela é comum não só em rãs adultas expostas à luz azul ou ultravioleta, mas também em girinos, salamandras e cecílias. A intensidade varia muito entre espécies. Em algumas é bastante evidente e em outras quase imperceptível. A fluorescência pode depender da pigmentação da pele, do muco ou dos ossos.^[52]

Borboletas

Borboletas cauda-de-andorinha do gênero Papilio têm sistemas elaborados de emissão de luz fluorescente. Suas asas contêm cristais impregnados de pigmento que produzem luz fluorescente direcionada. Esses cristais funcionam melhor quando absorvem radiância de luz azul-celeste, com comprimento de onda de aproximadamente 420 nm. Os comprimentos de onda que as borboletas enxergam melhor correspondem à absorbância dos cristais de suas asas. Isso provavelmente aumenta sua capacidade de sinalização.^[59]

Papagaios

Papagaios têm plumagem fluorescente que pode ser usada na sinalização durante a escolha de parceiros. Um estudo com experimentos de escolha em periquitos-australianos (Melopsittacus undulates) encontrou forte preferência, entre machos e fêmeas, por aves com o estímulo fluorescente experimental. O resultado apontou que a plumagem fluorescente não é apenas um subproduto da pigmentação, mas um sinal sexual adaptado. As vias que produzem pigmentos fluorescentes podem impor custos ao organismo. Indivíduos com fluorescência intensa poderiam, por isso, funcionar como indicadores honestos de alta qualidade individual por conseguirem arcar com esses custos.^[60]

Aracnídeos

Aranhas fluorescem sob luz ultravioleta e apresentam grande diversidade de fluoróforos. Andrews, Reed e Masta apontaram as aranhas como o único grupo conhecido em que a fluorescência é amplamente distribuída entre táxons, varia em sua expressão e mudou repetidas vezes durante a evolução, podendo estar sob seleção e ter função ecológica na sinalização intraespecífica e interespecífica.^[61] O estudo também encontrou origens repetidas da fluorescência entre táxons de aranhas, com novos fluoróforos surgindo durante sua diversificação.

Em algumas aranhas, sinais ultravioleta participam das interações entre predadores e presas, da comunicação intraespecífica e da camuflagem junto a flores fluorescentes. Condições ecológicas diferentes podem favorecer a redução ou o aumento da fluorescência conforme ela ajude a ocultar as aranhas ou as torne mais visíveis para predadores. A seleção natural pode atuar, dessa maneira, sobre a expressão da fluorescência nas diferentes espécies.^[61]

Escorpiões também são fluorescentes. Neles, isso ocorre pela presença de beta-carbolina na cutícula.^[62]

Ornitorrinco

Em 2020, a fluorescência foi registrada em exemplares de ornitorrinco.^[63]

Esquilos-voadores

Em 2019, observou-se por acaso que esquilos-voadores fluorescem em rosa sob luz ultravioleta. Pesquisas posteriores de biólogos do Northland College, no norte de Wisconsin, verificaram que isso ocorre nas três espécies norte-americanas de esquilos-voadores. Esquilos que não voam não fluorescem sob luz ultravioleta.^[64] Essa fluorescência pode ser um acidente evolutivo sem função biológica.^[65]

Plantas

Muitas plantas são fluorescentes por causa da clorofila, provavelmente a molécula fluorescente de distribuição mais ampla. Ela produz emissão vermelha sob diferentes comprimentos de onda de excitação.^[66] Ecólogos usam essa propriedade da clorofila para medir a eficiência fotossintética.^[67]

A flor de Mirabilis jalapa contém betacianinas violetas e fluorescentes e betaxantinas amarelas e fluorescentes. Sob luz branca, as partes da flor que contêm apenas betaxantinas parecem amarelas. Nas regiões onde há betaxantinas e betacianinas, a fluorescência visível se torna menos intensa por mecanismos internos de filtragem da luz. Propôs-se que a fluorescência participasse da atração de polinizadores, mas verificou-se depois que o sinal visual produzido por ela é desprezível em comparação com o sinal da luz refletida pela flor.^[68]

Um híbrido raro de Nepenthes, N. benstonei × N. rafflesiana, descoberto em 2025, apresentou fluorescência verde intensa nos peristômios de jarros maduros, enquanto jarros mais jovens apresentaram fluorescência azul.^[69] Antes desse registro, apenas fluorescência azul havia sido observada no gênero.^[70]

Abiótica

Gemologia, mineralogia e geologia

Além da fluorita, da qual deriva o nome do fenômeno,^[71] muitas gemas e minerais podem apresentar fluorescência própria ou fluorescer de formas diferentes sob ultravioleta de onda curta, ultravioleta de onda longa, luz visível ou raios X.

Muitos tipos de calcita e âmbar fluorescem sob ultravioleta de onda curta, ultravioleta de onda longa e luz visível. Rubis, esmeraldas e diamantes apresentam fluorescência vermelha sob ultravioleta de onda longa, luz azul e às vezes verde. Diamantes também emitem luz sob radiação de raios X.

A fluorescência em minerais é produzida por diferentes ativadores. Em alguns casos, a concentração do ativador precisa ficar abaixo de certo nível para impedir a supressão da emissão fluorescente. O mineral também deve estar livre de impurezas como ferro ou cobre, que podem suprimir a fluorescência. Manganês divalente, em concentrações de até alguns por cento, produz a fluorescência vermelha ou laranja da calcita, a verde da willemita, a amarela da esperita e a laranja da wollastonita e da clinoedrita. Urânio hexavalente na forma do cátion uranilo, UO₂²⁺, fluoresce em amarelo-esverdeado em qualquer concentração. Ele produz a fluorescência de minerais como autunita e andersonita e, em baixa concentração, a de materiais como algumas amostras de opala hialita. Cromo trivalente em baixa concentração produz a fluorescência vermelha do rubi. Európio divalente produz a fluorescência azul observada na fluorita. Lantanídeos trivalentes como térbio e disprósio são os principais ativadores da fluorescência amarelo-creme da variedade itrofluorita da fluorita e também participam da fluorescência laranja do zircão. Powellita, ou molibdato de cálcio, e scheelita, ou tungstato de cálcio, fluorescem de forma intrínseca em amarelo e azul, respectivamente. Quando aparecem juntas em solução sólida, a energia é transferida do tungstênio, de maior energia, para o molibdênio, de menor energia. Por isso, níveis relativamente baixos de molibdênio bastam para fazer a scheelita emitir amarelo em vez de azul. Esfalerita com baixo teor de ferro, ou sulfeto de zinco, fluoresce e fosforesce em diferentes cores conforme as impurezas-traço presentes.

O petróleo bruto fluoresce em cores que vão do marrom opaco em óleos pesados e alcatrões ao amarelo vivo e branco azulado em óleos muito leves e condensados. O fenômeno é usado em perfurações de exploração de petróleo para encontrar quantidades muito pequenas de óleo em cascalhos de perfuração e amostras de testemunho.

Ácidos húmicos e fúlvicos produzidos pela degradação da matéria orgânica dos solos, ou húmus, também podem fluorescer por causa da presença de ciclos aromáticos em suas estruturas moleculares.^[72] Substâncias húmicas dissolvidas em água subterrânea podem ser detectadas e caracterizadas por espectrofluorimetria.^[73]^[74]^[75]

Líquidos orgânicos

Soluções orgânicas, à base de carbono, como antraceno ou estilbeno dissolvidos em benzeno ou tolueno, fluorescem quando irradiadas por ultravioleta ou raios gama. O tempo de decaimento dessa fluorescência é da ordem de nanossegundos, pois a duração da luz depende do tempo de vida dos estados excitados do material fluorescente, neste caso antraceno ou estilbeno.^[77]

Cintilação é um lampejo de luz produzido em material transparente pela passagem de uma partícula, como um elétron, uma partícula alfa, um íon ou um fóton de alta energia. Estilbeno e seus derivados são usados em contadores de cintilação para detectar essas partículas. O estilbeno também é um dos meios ativos usados em lasers de corante.

Atmosfera

A fluorescência é observada na atmosfera quando o ar sofre bombardeamento por elétrons energéticos. Em casos como a aurora natural, explosões nucleares em grande altitude e experimentos com canhões de elétrons transportados por foguetes, as moléculas e os íons formados apresentam resposta fluorescente à luz.^[78]

Materiais comuns que fluorescem

Vitamina B2 fluoresce em verde, com emissão centrada em cerca de 525 nm.
Água tônica fluoresce em azul devido à presença de quinina.
A tinta de marcador de texto costuma ser fluorescente devido à presença de piranina.
Cédulas, selos postais e cartões de crédito costumam ter recursos fluorescentes de segurança.

Em novas tecnologias

Em agosto de 2020, pesquisadores relataram a criação dos materiais ópticos sólidos fluorescentes mais brilhantes até então. O método permitiu transferir propriedades de corantes de alta fluorescência por seu isolamento espacial e eletrônico, misturando corantes catiônicos com macrociclos de cianostar que se ligam a ânions. Um dos coautores citou possíveis usos na captação de energia solar, bioimagem e lasers.^[79]^[80]^[81]^[82]

Aplicações

Iluminação

A lâmpada fluorescente comum funciona por fluorescência. Dentro do tubo de vidro há um vácuo parcial e uma pequena quantidade de mercúrio. Uma descarga elétrica no tubo faz os átomos de mercúrio emitirem principalmente luz ultravioleta. A parede interna do tubo recebe uma camada de material fluorescente chamada fósforo, que absorve a luz ultravioleta e reemite luz visível. A iluminação fluorescente tem maior eficiência energética que elementos de iluminação incandescentes. O espectro irregular das lâmpadas fluorescentes tradicionais, porém, pode fazer certas cores parecerem diferentes de quando são iluminadas por luz incandescente ou pela luz do dia. O espectro de emissão do vapor de mercúrio é dominado por uma linha ultravioleta de onda curta em 254 nm, que fornece a maior parte da energia aos fósforos, acompanhada de emissão visível em 436 nm, azul, 546 nm, verde, e 579 nm, amarelo-alaranjado. Essas três linhas podem ser vistas sobrepostas ao contínuo branco com um espectroscópio manual na luz emitida por tubos fluorescentes brancos comuns. As mesmas linhas visíveis, junto às linhas de emissão do európio e do térbio trivalentes e ao contínuo de emissão do európio divalente na região azul, formam a emissão mais descontínua dos sistemas modernos de fósforos tricromáticos. Esses sistemas são usados em muitas lâmpadas fluorescentes compactas e lâmpadas tradicionais quando se busca melhor reprodução de cores.^[83]

Lâmpadas fluorescentes foram apresentadas ao público na Feira Mundial de Nova Iorque de 1939. Melhorias posteriores envolveram sobretudo fósforos melhores, vida útil maior, descarga interna mais uniforme e formatos mais fáceis de usar, como as lâmpadas fluorescentes compactas. Algumas lâmpadas de descarga de alta intensidade, ou HID, combinam sua eficiência elétrica ainda maior com fósforos que melhoram a reprodução de cores.^[84]

Diodos emissores de luz brancos, LEDs, chegaram ao mercado em meados da década de 1990 na forma de lâmpadas LED. Nelas, a luz azul emitida pelo semicondutor atinge fósforos depositados sobre o pequeno chip. A combinação da luz azul que atravessa o fósforo com a fluorescência verde a vermelha produz uma emissão resultante de luz branca.^[85]

Bastões luminosos às vezes usam materiais fluorescentes para absorver luz da reação quimioluminescente e emitir luz de outra cor.^[83]

Química analítica

Muitos procedimentos analíticos usam um fluorômetro, em geral com um único comprimento de onda de excitação e um único comprimento de onda de detecção. A sensibilidade do método permite medir concentrações de moléculas fluorescentes de até uma parte por trilhão.^[86]

A fluorescência em diferentes comprimentos de onda pode ser detectada por um detector matricial para identificar compostos no fluxo de cromatografia líquida de alta eficiência, HPLC. Placas de cromatografia em camada delgada, TLC, também podem ser visualizadas quando os compostos ou um reagente de coloração são fluorescentes. A fluorescência é mais eficiente quando há uma proporção maior de átomos nos níveis de energia mais baixos de uma distribuição de Boltzmann. A probabilidade de excitação e liberação de fótons por átomos de menor energia é então maior, tornando a análise mais eficiente.

Espectroscopia

Em um ensaio de fluorescência, a fonte pode emitir muitos comprimentos de onda. Em geral, a análise exige um único comprimento de onda. Para filtrá-lo seletivamente, a luz passa por um monocromador de excitação e o comprimento escolhido segue para a célula da amostra. Depois da absorção e reemissão de energia, podem surgir muitos comprimentos de onda por causa do deslocamento de Stokes e de diferentes transições eletrônicas. Para separá-los e analisá-los, a radiação fluorescente passa por um monocromador de emissão e é observada seletivamente por um detector.^[87]

Lasers

Lasers usam com frequência a fluorescência de certos materiais como meio ativo, como o brilho vermelho produzido por rubi, uma safira com cromo, o infravermelho de titânio-safira ou a ampla faixa de cores produzida por corantes orgânicos. Em condições normais, esses materiais fluorescem por emissão espontânea, na qual a luz sai em todas as direções e muitas vezes em muitas linhas espectrais discretas ao mesmo tempo. Em muitos lasers, o meio fluorescente é bombeado com uma fonte de luz intensa, criando uma inversão de população. Com isso, mais átomos ficam no estado excitado, de alta energia, que no estado fundamental, de baixa energia. A fluorescência espontânea pode então induzir outros átomos a emitir fótons na mesma direção e no mesmo comprimento de onda, produzindo emissão estimulada. Quando parte da fluorescência espontânea fica presa entre dois espelhos, quase toda a fluorescência do meio pode ser estimulada a sair na mesma linha, formando um feixe de laser.^[88]

Bioquímica e medicina

Nas ciências da vida, a fluorescência é usada em geral como método não destrutivo para rastrear ou analisar moléculas biológicas por sua emissão em uma frequência específica sem fundo da luz de excitação, pois relativamente poucos componentes celulares são naturalmente fluorescentes. Essa fluorescência natural é chamada de intrínseca ou autofluorescência. Uma proteína ou outro componente também pode ser "marcado" com um fluoróforo extrínseco, um corante fluorescente que pode ser uma molécula pequena, uma proteína ou um ponto quântico e tem muitas aplicações biológicas.^[15]^:xxvi

A quantidade de um corante pode ser medida com um espectrofluorômetro. Outras aplicações incluem:

Microscopia

A varredura da intensidade de fluorescência ao longo de um plano produz microscopia de fluorescência de tecidos, células ou estruturas subcelulares. Um anticorpo é marcado com um fluoróforo e se liga ao antígeno-alvo na amostra. A marcação de vários anticorpos com fluoróforos diferentes permite visualizar vários alvos na mesma imagem, em canais distintos. Microarranjos de DNA são uma variação dessa técnica.
Na imunologia, um grupo químico fluorescente é ligado a um anticorpo. Os locais onde o anticorpo se liga, por exemplo em uma amostra microscópica, podem ser vistos e quantificados pela fluorescência.
FLIM, microscopia de imagem por tempo de vida de fluorescência, pode detectar certas interações biomoleculares que alteram os tempos de vida da fluorescência.
Na biologia celular e molecular, a colocalização pode ser detectada com anticorpos marcados por fluorescência para a identificação seletiva de antígenos de interesse, usando programas especializados como o ImageJ.

Outras técnicas

FRET, transferência de energia por ressonância de Förster, também chamada de transferência de energia por ressonância de fluorescência, é usada para estudar interações entre proteínas, detectar sequências específicas de ácidos nucleicos e construir biossensores. O tempo de vida da fluorescência, medido por FLIM, pode fornecer uma camada adicional de informação.
Na biotecnologia, biossensores baseados em fluorescência são estudados como possíveis biossensores fluorescentes de glicose.
O sequenciamento automatizado de DNA pelo método de terminação da cadeia usa uma marca fluorescente específica para cada uma das quatro bases terminadoras. À medida que as moléculas de DNA marcadas são separadas, uma fonte ultravioleta excita o marcador, e a base que termina cada molécula é identificada pelo comprimento de onda da luz emitida.
FACS, ou separação celular ativada por fluorescência, é uma técnica de separação celular usada para separar linhagens celulares diferentes, em especial as isoladas de tecidos animais.
Na detecção de DNA, o brometo de etídio em solução aquosa apresenta pouca fluorescência porque ela é suprimida pela água. A fluorescência aumenta muito depois que o composto se liga ao DNA, o que o torna útil para visualizar a posição de fragmentos em eletroforese em gel de agarose. O etídio intercalado fica em um ambiente hidrofóbico entre os pares de bases do DNA, protegido da supressão pela água, que é excluída de seu ambiente local. O brometo de etídio pode ser carcinogênico. Uma alternativa possivelmente mais segura é o corante SYBR Green.
FIGS, cirurgia guiada por imagem de fluorescência, é uma técnica de imagem médica que usa fluorescência para detectar estruturas devidamente marcadas durante cirurgias.
A fluorescência intravascular é uma técnica de imagem médica baseada em cateter que usa fluorescência para detectar características de alto risco da aterosclerose e dispositivos de stent vascular não cicatrizados.^[89] A autofluorescência de placas foi usada em um primeiro estudo em seres humanos nas artérias coronárias em conjunto com tomografia de coerência óptica.^[90] Agentes moleculares também foram usados para detectar características específicas, como o acúmulo de fibrina em stents e atividade enzimática ligada à inflamação arterial.^[91]
SAFI, sigla de species altered fluorescence imaging, é uma técnica de imagem usada em fenômenos eletrocinéticos e microfluídica.^[92] Ela usa corantes não eletromigrantes cuja fluorescência é facilmente suprimida por espécies químicas migrantes de interesse. Os corantes costumam ser distribuídos por todo o fluxo, e a supressão diferencial de sua fluorescência pelos analitos é observada diretamente.
Ensaios baseados em fluorescência podem ser usados para a triagem de substâncias químicas tóxicas. Esses ensaios ópticos misturam corantes fluorescentes sensíveis ao ambiente com células de pele humana que produzem padrões de espectros de fluorescência.^[93] A abordagem pode reduzir a necessidade de animais de laboratório em pesquisa biomédica e na indústria farmacêutica.
Na detecção de margens ósseas, espécimes tingidos com alizarina e certos fósseis podem ser iluminados com luz fluorescente para mostrar estruturas anatômicas, entre elas as margens dos ossos.^[94]

Ciências forenses

Impressões digitais podem ser visualizadas com compostos fluorescentes como ninhidrina ou DFO, 1,8-diazafluoren-9-ona. Sangue e outras substâncias às vezes são detectados com reagentes fluorescentes, como fluoresceína. Fibras e outros materiais encontrados em perícias forenses ou relacionados a objetos colecionáveis às vezes são fluorescentes.

Ensaios não destrutivos

A inspeção por líquido penetrante fluorescente é usada para encontrar trincas e outros defeitos na superfície de uma peça. O traçamento com corantes fluorescentes é usado para encontrar vazamentos em sistemas hidráulicos de líquidos e gases.

Sinalização

Cores fluorescentes são usadas com frequência em sinalização, em especial nas placas de trânsito. Em geral, podem ser reconhecidas a distâncias maiores que suas equivalentes não fluorescentes, e o laranja fluorescente é particularmente perceptível.^[95] Essa propriedade levou ao uso frequente dessas cores em placas e etiquetas de segurança.

Branqueadores ópticos

Compostos fluorescentes são usados para melhorar a aparência de tecidos e papel, produzindo um efeito de "branqueamento". Uma superfície branca tratada com um branqueador óptico pode emitir mais luz visível do que a luz que incide sobre ela e, assim, parecer mais brilhante. A luz azul emitida pelo branqueador compensa a diminuição do azul no material tratado e desloca sua tonalidade do amarelo ou marrom em direção ao branco. Branqueadores ópticos são usados em detergentes para roupas, papéis de alta brancura, cosméticos e roupas de alta visibilidade.

Ver também

Fosforescência, forma de fotoluminescência em que a emissão pode persistir após o fim da excitação.
Espectroscopia de fluorescência, técnica que mede a emissão fluorescente de uma amostra.
Luz negra, fonte de radiação ultravioleta usada para excitar muitos materiais fluorescentes.
Lâmpada fluorescente, aplicação da fluorescência em sistemas de iluminação.

Referências

1 2 3 4 5 6 7 Valeur, B.; Berberan-Santos, M.R.N. (2011). «A brief history of fluorescence and phosphorescence before the emergence of quantum theory». Journal of Chemical Education. 88 (6): 731–738. Bibcode:2011JChEd..88..731V. doi:10.1021/ed100182h
1 2 Acuña, A. Ulises; Amat-Guerri, Francisco; Morcillo, Purificación; Liras, Marta; Rodríguez, Benjamín (2009). «Structure and formation of the fluorescent compound of lignum nephriticum» (PDF). Organic Letters. 11 (14): 3020–3023. PMID 19586062. doi:10.1021/ol901022g. Cópia arquivada (PDF) em 28 de julho de 2013
↑ Safford, W.E. (1916). «Lignum nephriticum» (PDF). Annual report of the Board of Regents of the Smithsonian Institution. Washington, D.C.: U.S. Government Printing Office. pp. 271–298. Cópia arquivada (PDF) em 29 de julho de 2013
↑ Muyskens, M.; Vitz, Ed (2006). «The fluorescence of lignum nephriticum: A flash back to the past and a simple demonstration of natural substance fluorescence». Journal of Chemical Education. 83 (5): 765. Bibcode:2006JChEd..83..765M. doi:10.1021/ed083p765
↑ Clarke, E.D. (1819). «Account of a newly discovered variety of green fluor spar, of very uncommon beauty, and with remarkable properties of colour and phosphorescence». The Annals of Philosophy. 14: 34–36. Cópia arquivada em 17 de janeiro de 2017. The finer crystals are perfectly transparent. Their colour by transmitted light is an intense emerald green; but by reflected light, the colour is a deep sapphire blue.
↑ Haüy, R.J. (1822). Traité de Minéralogie (em francês). 1 2 ed. Paris, França: Bachelier and Huzard. p. 512. Cópia arquivada em 17 de janeiro de 2017 – via Google Books
↑ Brewster, D. (1834). «On the colours of natural bodies». Transactions of the Royal Society of Edinburgh. 12 (2): 538–545, esp. 542. doi:10.1017/s0080456800031203. Cópia arquivada em 17 de janeiro de 2017 Na página 542, Brewster menciona que, quando a luz branca atravessa uma solução alcoólica de clorofila, luz vermelha é refletida por ela.
↑ Herschel, J. (1845). «On a case of superficial colour presented by a homogeneous liquid internally colourless». Philosophical Transactions of the Royal Society of London. 135: 143–145. doi:10.1098/rstl.1845.0004. Cópia arquivada em 24 de dezembro de 2016
↑ Herschel, J. (1845). «On the epipŏlic dispersion of light, being a supplement to a paper entitled, "On a case of superficial colour presented by a homogeneous liquid internally colourless"». Philosophical Transactions of the Royal Society of London. 135: 147–153. doi:10.1098/rstl.1845.0005. Cópia arquivada em 17 de janeiro de 2017
↑ Stokes, G.G. (1852). «On the change of refrangibility of light». Philosophical Transactions of the Royal Society of London. 142 (142): 463–562, esp. 479. Bibcode:1852RSPT..142..463.. doi:10.1098/rstl.1852.0022. Cópia arquivada em 17 de janeiro de 2017
↑ Qiu, Jianrong; Li, Yang; Jia, Yongchao (2021). Persistent phosphors: from fundamentals to applications. Col: Woodhead publishing series in electronic and optical materials. Duxford, Cambridge, MA, Kidlington: Woodhead Publishing, an imprint of Elsevier. ISBN 978-0-12-818772-2
↑ Verhoeven, J. W. (1 de janeiro de 1996). «Glossary of terms used in photochemistry (IUPAC Recommendations 1996)». Pure and Applied Chemistry (em alemão). 68 (12): 2223–2286. Bibcode:1996PApCh..68.2223V. ISSN 1365-3075. doi:10.1351/pac199668122223
1 2 3 4 5 Valeur, Bernard; Berberan-Santos, Mario (2012). Molecular Fluorescence: Principles and applications. [S.l.]: Wiley-VCH. p. 64. ISBN 978-3-527-32837-6
1 2 Mallick, Prabal Kumar (2023). Fundamentals of Molecular Spectroscopy (em inglês). Singapura: Springer Nature Singapore. ISBN 978-981-99-0790-8. doi:10.1007/978-981-99-0791-5
1 2 3 4 5 Lakowicz, Joseph R. (1999). Principles of Fluorescence Spectroscopy. [S.l.]: Kluwer Academic / Plenum Publishers. ISBN 978-0-387-31278-1
↑ Levitus, Marcia (22 de abril de 2020). «Tutorial: measurement of fluorescence spectra and determination of relative fluorescence quantum yields of transparent samples». Methods and Applications in Fluorescence. 8 (3): 033001. Bibcode:2020MApFl...8c3001L. ISSN 2050-6120. PMID 32150732. doi:10.1088/2050-6120/ab7e10
↑ Brouwer, Albert M. (31 de agosto de 2011). «Standards for photoluminescence quantum yield measurements in solution». Pure and Applied Chemistry. IUPAC Technical Report. 83 (12): 2213–2228. ISSN 1365-3075. doi:10.1351/PAC-REP-10-09-31
↑ Nawara, Krzysztof; Waluk, Jacek (16 de abril de 2019). «Goodbye to quinine in sulfuric acid solutions as a fluorescence quantum yield standard». Analytical Chemistry (em inglês). 91 (8): 5389–5394. Bibcode:2019AnaCh..91.5389N. ISSN 0003-2700. PMID 30907575. doi:10.1021/acs.analchem.9b00583. Cópia arquivada em 7 de fevereiro de 2021
↑ "Animation for the Principle of Fluorescence and UV-Visible Absorbance". PharmaXChange.info. Arquivado em 9 de junho de 2013.
↑ Schieber, Frank (outubro de 2001). «Modeling the Appearance of Fluorescent Colors». Proceedings of the Human Factors and Ergonomics Society Annual Meeting. 45 (18): 1324–1327. doi:10.1177/154193120104501802
↑ IUPAC. PAC, 2007, 79, 293. Glossary of terms used in photochemistry, 3rd edition (IUPAC Recommendations 2006), p. 360. https://goldbook.iupac.org/terms/view/K03370
↑ IUPAC. Compendium of Chemical Terminology, 2nd ed. (the "Gold Book"). Compilado por McNaught, A.D. e Wilkinson, A. Blackwell Scientific Publications, Oxford, 1997. Arquivado em 21 de março de 2012.
↑ Dunlop, David; Ludvíková, Lucie; Banerjee, Ambar; Ottosson, Henrik; Slanina, Tomáš. "Excited-State (Anti)Aromaticity Explains Why Azulene Disobeys Kasha's Rule". Journal of the American Chemical Society, 2023, 145 (39), 21569–21575. DOI: 10.1021/jacs.3c07625.
↑ Qian, Hai; Cousins, Morgan E.; Horak, Erik H.; Wakefield, Audrey; Liptak, Matthew D.; Aprahamian, Ivan (janeiro de 2017). «Suppression of Kasha's rule as a mechanism for fluorescent molecular rotors and aggregation-induced emission». Nature Chemistry (em inglês). 9 (1): 83–87. ISSN 1755-4330. PMID 27995926. doi:10.1038/nchem.2612
1 2 3 «Fluorescence in marine organisms». Gestalt Switch Expeditions. Cópia arquivada em 21 de fevereiro de 2015
↑ Press Trust of India. "Fluorescence discovered in tiny Brazilian frogs". Business Standard India, 29 de março de 2019. Consultado em 30 de março de 2019. Arquivado em 30 de março de 2019.
↑ Utsav (2 de dezembro de 2017). «Top 10 Amazing Bioluminescent Animals on Planet Earth» (em inglês). Earth and World. Consultado em 30 de março de 2019. Cópia arquivada em 30 de março de 2019
↑ Ward, William W.; Cormier, Milton J. (1978). «Energy Transfer Via Protein–Protein Interaction in Renilla Bioluminescence». Photochemistry and Photobiology. 27 (4): 389–396. doi:10.1111/j.1751-1097.1978.tb07621.x
↑ «Why do glow-in-the-dark things light up when it's dark?». Washington State University. 24 de abril de 2025. Consultado em 14 de setembro de 2026
↑ Viviani, Vadim R. (13 de dezembro de 2023). «Biophosphorescence in fluorescent millipedes (Diplopoda: Xystodesmidae) and its relationships with bioluminescence». Scientific Reports (em inglês). 13 (1). ISSN 2045-2322. PMC 10719341. PMID 38092798. doi:10.1038/s41598-023-47860-9
1 2 3 4 Wucherer, M. F.; Michiels, N. K. (2012). «A Fluorescent Chromatophore Changes the Level of Fluorescence in a Reef Fish». PLOS ONE. 7 (6). Bibcode:2012PLoSO...737913W. PMC 3368913. PMID 22701587. doi:10.1371/journal.pone.0037913 Parâmetro desconhecido |número-artigo= ignorado (ajuda)
↑ Fujii, R (2000). «The regulation of motile activity in fish chromatophores». Pigment Cell Research. 13 (5): 300–19. PMID 11041206. doi:10.1034/j.1600-0749.2000.130502.x
↑ Abbott, F. S. (1973). «Endocrine Regulation of Pigmentation in Fish». Integrative and Comparative Biology. 13 (3): 885–894. doi:10.1093/icb/13.3.885
1 2 3 4 5 Sparks, J. S.; Schelly, R. C.; Smith, W. L.; Davis, M. P.; Tchernov, D.; Pieribone, V. A.; Gruber, D. F. (2014). Fontaneto, Diego, ed. «The Covert World of Fish Biofluorescence: A Phylogenetically Widespread and Phenotypically Variable Phenomenon». PLOS ONE. 9 (1). Bibcode:2014PLoSO...983259S. PMC 3885428. PMID 24421880. doi:10.1371/journal.pone.0083259 Parâmetro desconhecido |número-artigo= ignorado (ajuda)
1 2 Beyer, Steffen. «Biology of underwater fluorescence». Fluopedia.org. Consultado em 19 de janeiro de 2022. Cópia arquivada em 30 de julho de 2020
↑ Haddock, S. H. D.; Dunn, C. W. (2015). «Fluorescent proteins function as a prey attractant: experimental evidence from the hydromedusa Olindias formosus and other marine organisms». Biology Open. 4 (9): 1094–1104. ISSN 2046-6390. PMC 4582119. PMID 26231627. doi:10.1242/bio.012138
↑ Mazel, Charles (2017). «Method for Determining the Contribution of Fluorescence to an Optical Signature, with Implications for Postulating a Visual Function». Frontiers in Marine Science. 4. Bibcode:2017FrMaS...4..266M. ISSN 2296-7745. doi:10.3389/fmars.2017.00266 Parâmetro desconhecido |número-artigo= ignorado (ajuda)
↑ Matz, M. «Fluorescence: The Secret Color of the Deep». Office of Ocean Exploration and Research, U.S. National Oceanic and Atmospheric Administration. Cópia arquivada em 31 de outubro de 2014
1 2 Heinermann, P (10 de março de 2014). «Yellow intraocular filters in fishes». Experimental Biology. 43 (2): 127–147. PMID 6398222
1 2 3 4 5 Michiels, N. K.; Anthes, N.; Hart, N. S.; Herler, J. R.; Meixner, A. J.; Schleifenbaum, F.; Schulte, G.; Siebeck, U. E.; Sprenger, D.; Wucherer, M. F. (2008). «Red fluorescence in reef fish: A novel signalling mechanism?». BMC Ecology. 8 (1): 16. Bibcode:2008BMCE....8...16M. PMC 2567963. PMID 18796150. doi:10.1186/1472-6785-8-16
↑ Gerlach, T; Sprenger, D; Michiels, N. K. (2014). «Fairy wrasses perceive and respond to their deep red fluorescent coloration». Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 281 (1787). Bibcode:2014PBioS.28140787G. PMC 4071555. PMID 24870049. doi:10.1098/rspb.2014.0787 Parâmetro desconhecido |número-artigo= ignorado (ajuda)
↑ Park, Hyun Bong; Lam, Yick Chong; Gaffney, Jean P.; Weaver, James C.; Krivoshik, Sara Rose; Hamchand, Randy; Pieribone, Vincent; Gruber, David F.; Crawford, Jason M. (27 de setembro de 2019). «Bright Green Biofluorescence in Sharks Derives from Bromo-Kynurenine Metabolism». iScience (em inglês). 19: 1291–1336. Bibcode:2019iSci...19.1291P. ISSN 2589-0042. PMC 6831821. PMID 31402257. doi:10.1016/j.isci.2019.07.019
↑ Salih, A.; Larkum, A.; Cox, G.; Kühl, M.; Hoegh-Guldberg, O. (2000). «Fluorescent pigments in corals are photoprotective». Nature. 408 (6814): 850–3. Bibcode:2000Natur.408..850S. PMID 11130722. doi:10.1038/35048564. Cópia arquivada em 22 de dezembro de 2015
↑ Roth, M. S.; Latz, M. I.; Goericke, R.; Deheyn, D. D. (2010). «Green fluorescent protein regulation in the coral Acropora yongei during photoacclimation». Journal of Experimental Biology. 213 (21): 3644–3655. Bibcode:2010JExpB.213.3644R. PMID 20952612. doi:10.1242/jeb.040881
↑ Bou-Abdallah, F.; Chasteen, N. D.; Lesser, M. P. (2006). «Quenching of superoxide radicals by green fluorescent protein». Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects. 1760 (11): 1690–1695. PMC 1764454. PMID 17023114. doi:10.1016/j.bbagen.2006.08.014
↑ Field, S. F.; Bulina, M. Y.; Kelmanson, I. V.; Bielawski, J. P.; Matz, M. V. (2006). «Adaptive Evolution of Multicolored Fluorescent Proteins in Reef-Building Corals». Journal of Molecular Evolution. 62 (3): 332–339. Bibcode:2006JMolE..62..332F. PMID 16474984. doi:10.1007/s00239-005-0129-9
↑ Mäthger, L. M.; Denton, E. J. (2001). «Reflective properties of iridophores and fluorescent 'eyespots' in the loliginid squid Alloteuthis subulata and Loligo vulgaris». The Journal of Experimental Biology. 204 (Pt 12): 2103–18. Bibcode:2001JExpB.204.2103M. PMID 11441052. doi:10.1242/jeb.204.12.2103. Cópia arquivada em 4 de março de 2016
↑ Tsien, R. Y. (1998). «The Green Fluorescent Protein». Annual Review of Biochemistry. 67: 509–544. PMID 9759496. doi:10.1146/annurev.biochem.67.1.509
↑ Mazel, C. H. (2004). «Fluorescent Enhancement of Signaling in a Mantis Shrimp». Science. 303 (5654): 51. Bibcode:2004Sci...303...51M. PMID 14615546. doi:10.1126/science.1089803
↑ Bou-Abdallah, F.; Chasteen, N. D.; Lesser, M. P. (2006). «Quenching of superoxide radicals by green fluorescent protein». Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects. 1760 (11): 1690–1695. PMC 1764454. PMID 17023114. doi:10.1016/j.bbagen.2006.08.014
↑ Douglas, R. H.; Partridge, J. C.; Dulai, K.; Hunt, D.; Mullineaux, C. W.; Tauber, A. Y.; Hynninen, P. H. (1998). «Dragon fish see using chlorophyll». Nature. 393 (6684): 423–424. Bibcode:1998Natur.393..423D. doi:10.1038/30871
1 2 Lamb, J.Y.; M.P. Davis (2020). «Salamanders and other amphibians are aglow with biofluorescence». Scientific Reports. 10 (1): 2821. Bibcode:2020NatSR..10.2821L. PMC 7046780. PMID 32108141. doi:10.1038/s41598-020-59528-9
↑ Wong, Sam (13 de março de 2017). «Luminous frog is the first known naturally fluorescent amphibian». Consultado em 22 de março de 2017. Cópia arquivada em 20 de março de 2017
↑ King, Anthony (13 de março de 2017). «Fluorescent frog first down to new molecule». Consultado em 22 de março de 2017. Cópia arquivada em 22 de março de 2017
↑ Taboada, C.; A.E. Brunetti; C. Alexandre; M.G. Lagorio; J. Faivovich (2017). «Fluorescent Frogs: A Herpetological Perspective». South American Journal of Herpetology. 12 (1): 1–13. doi:10.2994/SAJH-D-17-00029.1. hdl:11336/48638
1 2 Sandra Goutte; Matthew J. Mason; Marta M. Antoniazzi; Carlos Jared; Didier Merle; Lilian Cazes; Luís Felipe Toledo; Hanane el-Hafci; Stéphane Pallu; Hugues Portier; Stefan Schramm; Pierre Gueriau; Mathieu Thoury (2019). «Intense bone fluorescence reveals hidden patterns in pumpkin toadlets». Scientific Reports. 9 (1): 5388. Bibcode:2019NatSR...9.5388G. PMC 6441030. PMID 30926879. doi:10.1038/s41598-019-41959-8
↑ Fox, A. (2 de abril de 2019). «Scientists discover a frog with glowing bones». ScienceMag. Consultado em 9 de fevereiro de 2020. Cópia arquivada em 8 de março de 2020
↑ Rebouças, R.; A.B. Carollo; M.d.O. Freitas; C. Lambertini; R.M. Nogueira dos Santos; L.F. Toledo (2019). «Conservation Status of Brachycephalus Toadlets (Anura: Brachycephalidae) from the Brazilian Atlantic Rainforest». Diversity. 55 (1): 39–47. Bibcode:2019Diver..11..150B. doi:10.3390/d11090150. hdl:11449/188070
↑ Vukusic, P; Hooper, I (2005). «Directionally controlled fluorescence emission in butterflies». Science. 310 (5751): 1151. PMID 16293753. doi:10.1126/science.1116612
↑ Arnold, K. E. (2002). «Fluorescent Signaling in Parrots». Science. 295 (5552): 92. PMID 11778040. doi:10.1126/science.295.5552.92
1 2 Andrews, K.; Reed, S.M.; Masta, S.E. (2007). «Spiders fluoresce variably across many taxa». Biology Letters. 3 (3): 265–267. Bibcode:2007BiLet...3..265A. PMC 2104643. PMID 17412670. doi:10.1098/rsbl.2007.0016
↑ Stachel, S.J.; Stockwell, S.A.; van Vranken, D.L. (1999). «The fluorescence of scorpions and cataractogenesis». Chemistry & Biology. 6 (8): 531–539. PMID 10421760. doi:10.1016/S1074-5521(99)80085-4
↑ Spaeth, P. (2020). «Biofluorescence in the platypus (Ornithorhynchus anatinus)». Mammalia. 85 (2): 179–181. doi:10.1515/mammalia-2020-0027
↑ Anich, Paula Spaeth; Martin, Jonathan G.; Olson, Erik R.; Kohler, Allison M. (2019). «Ultraviolet fluorescence discovered in New World flying squirrels (Glaucomys)». Journal of Mammalogy (em inglês). 100: 21–30. doi:10.1093/jmammal/gyy177
↑ Nicolaï, Michaël P. J.; Bok, Michael J.; Abalos, Javier; D'Alba, Liliana; Shawkey, Matthew D.; Goldenberg, Jonathan (11 de junho de 2024). «The function and consequences of fluorescence in tetrapods». Proceedings of the National Academy of Sciences (em inglês). 121 (24). Bibcode:2024PNAS..12118189N. ISSN 0027-8424. PMC 11181051. PMID 38814876. doi:10.1073/pnas.2318189121 Parâmetro desconhecido |número-artigo= ignorado (ajuda)
↑ McDonald, Maurice S. (2 de junho de 2003). Photobiology of Higher Plants (em inglês). [S.l.]: John Wiley & Sons. ISBN 978-0-470-85523-2. Cópia arquivada em 21 de dezembro de 2017
↑ «5.1 Chlorophyll fluorescence – ClimEx Handbook» (em inglês). Consultado em 14 de janeiro de 2020. Cópia arquivada em 14 de janeiro de 2020
↑ Iriel, A. A.; Lagorio, M. A. G. (2010). «Is the flower fluorescence relevant in biocommunication?». Naturwissenschaften. 97 (10): 915–924. Bibcode:2010NW.....97..915I. PMID 20811871. doi:10.1007/s00114-010-0709-4
↑ Tamizi, Amin Asyaf; Shakri, Mohamad Alias; Mat-Amin, Noriha (2025). «A natural hybrid of the carnivorous plant Nepenthes benstonei × rafflesiana (Nepenthaceae) emits vivid green autofluorescence: the first report for the genus». Tropical Ecology. 41: 1–9. doi:10.1017/S0266467425100345. Consultado em 30 de março de 2026
↑ Kurup, R.; Johnson, A. J.; Sankar, S.; Hussain, A. A.; Sathish Kumar, C.; Sabulal, B. (5 de fevereiro de 2013). «Fluorescent prey traps in carnivorous plants». Plant Biology. 15 (3): 611–615. doi:10.1111/j.1438-8677.2012.00709.x. Consultado em 30 de março de 2026
↑ Raman, C.V. (1962). "The luminescence of fluorspar". Curr. Sci., 31, 361–365.
↑ Mobed, Jarafshan J.; Hemmingsen, Sherry L.; Autry, Jennifer L.; McGown, Linda B. (1 de setembro de 1996). «Fluorescence characterization of IHSS humic substances: Total luminescence spectra with absorbance correction». Environmental Science & Technology. 30 (10): 3061–3065. Bibcode:1996EnST...30.3061M. ISSN 0013-936X. doi:10.1021/es960132l
↑ Milori, Débora MBP; Martin-Neto, Ladislau; Bayer, Cimélio; Mielniczuk, João; Bagnato, Vanderlei S (2002). «Humification degree of soil humic acids determined by fluorescence spectroscopy». Soil Science. 167 (11): 739–749. Bibcode:2002SoilS.167..739M. ISSN 0038-075X. doi:10.1097/00010694-200211000-00004
↑ Richard, C; Trubetskaya, O; Trubetskoj, O; Reznikova, O; Afanas' Eva, G; Aguer, J-P; Guyot, G (2004). «Key role of the low molecular size fraction of soil humic acids for fluorescence and photoinductive activity». Environmental Science & Technology. 38 (7): 2052–2057. Bibcode:2004EnST...38.2052R. ISSN 0013-936X. PMID 15112806. doi:10.1021/es030049f
↑ Sierra, MMD; Giovanela, M; Parlanti, E; Soriano-Sierra, EJ (2005). «Fluorescence fingerprint of fulvic and humic acids from varied origins as viewed by single-scan and excitation/emission matrix techniques». Chemosphere. 58 (6): 715–733. Bibcode:2005Chmsp..58..715S. ISSN 0045-6535. PMID 15621185. doi:10.1016/j.chemosphere.2004.09.038
↑ Dramićanin, Tatjana; Zeković, Ivana; Periša, Jovana; Dramićanin, Miroslav D. (2019). «The Parallel Factor Analysis of Beer Fluorescence». Journal of Fluorescence. 29 (5): 1103–1111. PMID 31396828. doi:10.1007/s10895-019-02421-0
↑ Birks, J. B. (1962). «The Fluorescence and Scintillation Decay Times of Crystalline Anthracene». Proceedings of the Physical Society. 79 (3): 494–496. Bibcode:1962PPS....79..494B. doi:10.1088/0370-1328/79/3/306
↑ Gilmore, F. R.; Laher, R. R.; Espy, P. J. (1992). «Franck–Condon Factors, r-Centroids, Electronic Transition Moments, and Einstein Coefficients for Many Nitrogen and Oxygen Band Systems». Journal of Physical and Chemical Reference Data. 21 (5): 1005. Bibcode:1992JPCRD..21.1005G. doi:10.1063/1.555910. Cópia arquivada em 9 de julho de 2017
↑ «Chemists create the brightest-ever fluorescent materials». phys.org (em inglês). Consultado em 6 de setembro de 2020. Cópia arquivada em 3 de setembro de 2020
↑ «Scientists create the brightest fluorescent materials in existence». New Atlas. 7 de agosto de 2020. Consultado em 6 de setembro de 2020. Cópia arquivada em 13 de setembro de 2020
↑ «Scientists create 'brightest known materials in existence'». independent.co.uk (em inglês). Consultado em 6 de setembro de 2020. Cópia arquivada em 25 de setembro de 2020
↑ Benson, Christopher R.; Kacenauskaite, Laura; VanDenburgh, Katherine L.; Zhao, Wei; Qiao, Bo; Sadhukhan, Tumpa; Pink, Maren; Chen, Junsheng; Borgi, Sina; Chen, Chun-Hsing; Davis, Brad J.; Simon, Yoan C.; Raghavachari, Krishnan; Laursen, Bo W.; Flood, Amar H. (6 de agosto de 2020). «Plug-and-Play Optical Materials from Fluorescent Dyes and Macrocycles». Chem (em inglês). 6 (8): 1978–1997. Bibcode:2020Chem....6.1978B. ISSN 2451-9294. doi:10.1016/j.chempr.2020.06.029
1 2 Harris, Tom (7 de dezembro de 2001). «How Fluorescent Lamps Work». HowStuffWorks. Discovery Communications. Consultado em 27 de junho de 2010. Cópia arquivada em 6 de julho de 2010
↑ Flesch, P. (2006). Light and light sources: high-intensity discharge lamps. Berlim: Springer-Verlag. ISBN 978-3-540-32685-4. OCLC 262693002
↑ Chen, Lei; Lin, Chun-Che; Yeh, Chiao-Wen; Liu, Ru-Shi (22 de março de 2010). «Light Converting Inorganic Phosphors for White Light-Emitting Diodes». Materials. 3 (3): 2172–2195. Bibcode:2010Mate....3.2172C. ISSN 1996-1944. PMC 5445896. doi:10.3390/ma3032172
↑ Rye, H. S.; Dabora, J. M.; Quesada, M. A.; Mathies, R. A.; Glazer, A. N. (1993). «Fluorometric Assay Using Dimeric Dyes for Double- and Single-Stranded DNA and RNA with Picogram Sensitivity». Analytical Biochemistry. 208 (1): 144–150. Bibcode:1993AnBio.208..144R. PMID 7679561. doi:10.1006/abio.1993.1020
↑ Harris, Daniel C. (2004). Exploring chemical analysis. [S.l.]: Macmillan. ISBN 978-0-7167-0571-0. Cópia arquivada em 31 de julho de 2016
↑ Katayama, Seiji. Fundamental and Details of Laser Welding. Springer, 2020, p. 3–5.
↑ Calfon MA, Vinegoni C, Ntziachristos V, Jaffer FA (2010). «Intravascular near-infrared fluorescence molecular imaging of atherosclerosis: toward coronary arterial visualization of biologically high-risk plaques.». J Biomed Opt. 15 (1): 011107–011107–6. Bibcode:2010JBO....15a1107C. PMC 3188610. PMID 20210433. doi:10.1117/1.3280282
↑ Ughi GJ, Wang H, Gerbaud E, Gardecki JA, Fard AM, Hamidi E et al. (2016). «Clinical Characterization of Coronary Atherosclerosis With Dual-Modality OCT and Near-Infrared Autofluorescence Imaging». JACC Cardiovasc Imaging. 9 (11): 1304–1314. PMC 5010789. PMID 26971006. doi:10.1016/j.jcmg.2015.11.020
↑ Hara T, Ughi GJ, McCarthy JR, Erdem SS, Mauskapf A, Lyon SC et al. (2015). «Intravascular fibrin molecular imaging improves the detection of unhealed stents assessed by optical coherence tomography in vivo». Eur Heart J. 38 (6): 447–455. PMC 5837565. PMID 26685129. doi:10.1093/eurheartj/ehv677
↑ Shkolnikov, V; Santiago, J. G. (2013). «A method for non-invasive full-field imaging and quantification of chemical species» (PDF). Lab on a Chip. 13 (8): 1632–43. PMID 23463253. doi:10.1039/c3lc41293h. Cópia arquivada (PDF) em 5 de março de 2016
↑ Moczko, E; Mirkes, EM; Cáceres, C; Gorban, AN; Piletsky, S (2016). «Fluorescence-based assay as a new screening tool for toxic chemicals». Scientific Reports. 6. Bibcode:2016NatSR...633922M. PMC 5031998. PMID 27653274. doi:10.1038/srep33922 Parâmetro desconhecido |número-artigo= ignorado (ajuda)
↑ Smith, W. Leo; Buck, Chesney A.; Ornay, Gregory S.; Davis, Matthew P.; Martin, Rene P.; Gibson, Sarah Z.; Girard, Matthew G. (20 de agosto de 2018). «Improving Vertebrate Skeleton Images: Fluorescence and the Non-Permanent Mounting of Cleared-and-Stained Specimens». Copeia (em inglês). 106 (3): 427–435. ISSN 0045-8511. doi:10.1643/cg-18-047
↑ Hawkins, H. Gene; Carlson, Paul John; Elmquist, Michael (2000). "Evaluation of fluorescent orange signs". Texas Transportation Institute Report 2962-S. Arquivado em 4 de março de 2016.

Leitura adicional

The Story of Fluorescence. [S.l.]: Raytech Industries. 1965

Ligações externas

O Commons possui uma categoria com imagens e outros ficheiros sobre Fluorescência

Fluorophores.org, banco de dados de corantes fluorescentes arquivado.
FSU.edu, conceitos básicos de fluorescência.
"A nano-history of fluorescence", palestra de David Jameson.
Espectros de excitação e emissão de diferentes corantes fluorescentes.
Banco de dados de minerais fluorescentes com imagens, ativadores e espectros no Fluomin.org.
"Biofluorescent Night Dive – Dahab/Red Sea (Egypt), Masbat Bay/Mashraba, 'Roman Rock'". YouTube, 9 de outubro de 2012.
Steffen O. Beyer. "FluoPedia.org: Publications". Fluopedia.org.
Steffen O. Beyer. "FluoMedia.org: Science". Fluomedia.org.
Courtney Whitcher. Finding Fluorescence, projeto participativo de quintal para identificar novos exemplos de fluorescência.

[Valeur-1] 1 2 3 4 5 6 7 Valeur, B.; Berberan-Santos, M.R.N. (2011). «A brief history of fluorescence and phosphorescence before the emergence of quantum theory». Journal of Chemical Education. 88 (6): 731–738. Bibcode:2011JChEd..88..731V. doi:10.1021/ed100182h

[acuna-2] 1 2 Acuña, A. Ulises; Amat-Guerri, Francisco; Morcillo, Purificación; Liras, Marta; Rodríguez, Benjamín (2009). «Structure and formation of the fluorescent compound of lignum nephriticum» (PDF). Organic Letters. 11 (14): 3020–3023. PMID 19586062. doi:10.1021/ol901022g. Cópia arquivada (PDF) em 28 de julho de 2013

[saff-3] Safford, W.E. (1916). «Lignum nephriticum» (PDF). Annual report of the Board of Regents of the Smithsonian Institution. Washington, D.C.: U.S. Government Printing Office. pp. 271–298. Cópia arquivada (PDF) em 29 de julho de 2013

[4] Muyskens, M.; Vitz, Ed (2006). «The fluorescence of lignum nephriticum: A flash back to the past and a simple demonstration of natural substance fluorescence». Journal of Chemical Education. 83 (5): 765. Bibcode:2006JChEd..83..765M. doi:10.1021/ed083p765

[5] Clarke, E.D. (1819). «Account of a newly discovered variety of green fluor spar, of very uncommon beauty, and with remarkable properties of colour and phosphorescence». The Annals of Philosophy. 14: 34–36. Cópia arquivada em 17 de janeiro de 2017. The finer crystals are perfectly transparent. Their colour by transmitted light is an intense emerald green; but by reflected light, the colour is a deep sapphire blue.

[Haüy-1822-6] Haüy, R.J. (1822). Traité de Minéralogie (em francês). 1 2 ed. Paris, França: Bachelier and Huzard. p. 512. Cópia arquivada em 17 de janeiro de 2017 – via Google Books

[7] Brewster, D. (1834). «On the colours of natural bodies». Transactions of the Royal Society of Edinburgh. 12 (2): 538–545, esp. 542. doi:10.1017/s0080456800031203. Cópia arquivada em 17 de janeiro de 2017 Na página 542, Brewster menciona que, quando a luz branca atravessa uma solução alcoólica de clorofila, luz vermelha é refletida por ela.

[8] Herschel, J. (1845). «On a case of superficial colour presented by a homogeneous liquid internally colourless». Philosophical Transactions of the Royal Society of London. 135: 143–145. doi:10.1098/rstl.1845.0004. Cópia arquivada em 24 de dezembro de 2016

[9] Herschel, J. (1845). «On the epipŏlic dispersion of light, being a supplement to a paper entitled, "On a case of superficial colour presented by a homogeneous liquid internally colourless"». Philosophical Transactions of the Royal Society of London. 135: 147–153. doi:10.1098/rstl.1845.0005. Cópia arquivada em 17 de janeiro de 2017

[Stokes-1852-10] Stokes, G.G. (1852). «On the change of refrangibility of light». Philosophical Transactions of the Royal Society of London. 142 (142): 463–562, esp. 479. Bibcode:1852RSPT..142..463.. doi:10.1098/rstl.1852.0022. Cópia arquivada em 17 de janeiro de 2017

[11] Qiu, Jianrong; Li, Yang; Jia, Yongchao (2021). Persistent phosphors: from fundamentals to applications. Col: Woodhead publishing series in electronic and optical materials. Duxford, Cambridge, MA, Kidlington: Woodhead Publishing, an imprint of Elsevier. ISBN 978-0-12-818772-2

[12] Verhoeven, J. W. (1 de janeiro de 1996). «Glossary of terms used in photochemistry (IUPAC Recommendations 1996)». Pure and Applied Chemistry (em alemão). 68 (12): 2223–2286. Bibcode:1996PApCh..68.2223V. ISSN 1365-3075. doi:10.1351/pac199668122223

[Berberan-Santos,_Mario-2012-13] 1 2 3 4 5 Valeur, Bernard; Berberan-Santos, Mario (2012). Molecular Fluorescence: Principles and applications. [S.l.]: Wiley-VCH. p. 64. ISBN 978-3-527-32837-6

[Mallick-2023-14] 1 2 Mallick, Prabal Kumar (2023). Fundamentals of Molecular Spectroscopy (em inglês). Singapura: Springer Nature Singapore. ISBN 978-981-99-0790-8. doi:10.1007/978-981-99-0791-5

[Lakowicz-1999-15] 1 2 3 4 5 Lakowicz, Joseph R. (1999). Principles of Fluorescence Spectroscopy. [S.l.]: Kluwer Academic / Plenum Publishers. ISBN 978-0-387-31278-1

[16] Levitus, Marcia (22 de abril de 2020). «Tutorial: measurement of fluorescence spectra and determination of relative fluorescence quantum yields of transparent samples». Methods and Applications in Fluorescence. 8 (3): 033001. Bibcode:2020MApFl...8c3001L. ISSN 2050-6120. PMID 32150732. doi:10.1088/2050-6120/ab7e10

[17] Brouwer, Albert M. (31 de agosto de 2011). «Standards for photoluminescence quantum yield measurements in solution». Pure and Applied Chemistry. IUPAC Technical Report. 83 (12): 2213–2228. ISSN 1365-3075. doi:10.1351/PAC-REP-10-09-31

[18] Nawara, Krzysztof; Waluk, Jacek (16 de abril de 2019). «Goodbye to quinine in sulfuric acid solutions as a fluorescence quantum yield standard». Analytical Chemistry (em inglês). 91 (8): 5389–5394. Bibcode:2019AnaCh..91.5389N. ISSN 0003-2700. PMID 30907575. doi:10.1021/acs.analchem.9b00583. Cópia arquivada em 7 de fevereiro de 2021

[mehta-19] "Animation for the Principle of Fluorescence and UV-Visible Absorbance". PharmaXChange.info. Arquivado em 9 de junho de 2013.

[20] Schieber, Frank (outubro de 2001). «Modeling the Appearance of Fluorescent Colors». Proceedings of the Human Factors and Ergonomics Society Annual Meeting. 45 (18): 1324–1327. doi:10.1177/154193120104501802

[21] IUPAC. PAC, 2007, 79, 293. Glossary of terms used in photochemistry, 3rd edition (IUPAC Recommendations 2006), p. 360. https://goldbook.iupac.org/terms/view/K03370

[22] IUPAC. Compendium of Chemical Terminology, 2nd ed. (the "Gold Book"). Compilado por McNaught, A.D. e Wilkinson, A. Blackwell Scientific Publications, Oxford, 1997. Arquivado em 21 de março de 2012.

[23] Dunlop, David; Ludvíková, Lucie; Banerjee, Ambar; Ottosson, Henrik; Slanina, Tomáš. "Excited-State (Anti)Aromaticity Explains Why Azulene Disobeys Kasha's Rule". Journal of the American Chemical Society, 2023, 145 (39), 21569–21575. DOI: 10.1021/jacs.3c07625.

[24] Qian, Hai; Cousins, Morgan E.; Horak, Erik H.; Wakefield, Audrey; Liptak, Matthew D.; Aprahamian, Ivan (janeiro de 2017). «Suppression of Kasha's rule as a mechanism for fluorescent molecular rotors and aggregation-induced emission». Nature Chemistry (em inglês). 9 (1): 83–87. ISSN 1755-4330. PMID 27995926. doi:10.1038/nchem.2612

[Fluorescence_in_marine_organisms-25] 1 2 3 «Fluorescence in marine organisms». Gestalt Switch Expeditions. Cópia arquivada em 21 de fevereiro de 2015

[26] Press Trust of India. "Fluorescence discovered in tiny Brazilian frogs". Business Standard India, 29 de março de 2019. Consultado em 30 de março de 2019. Arquivado em 30 de março de 2019.

[27] Utsav (2 de dezembro de 2017). «Top 10 Amazing Bioluminescent Animals on Planet Earth» (em inglês). Earth and World. Consultado em 30 de março de 2019. Cópia arquivada em 30 de março de 2019

[28] Ward, William W.; Cormier, Milton J. (1978). «Energy Transfer Via Protein–Protein Interaction in Renilla Bioluminescence». Photochemistry and Photobiology. 27 (4): 389–396. doi:10.1111/j.1751-1097.1978.tb07621.x

[29] «Why do glow-in-the-dark things light up when it's dark?». Washington State University. 24 de abril de 2025. Consultado em 14 de setembro de 2026

[30] Viviani, Vadim R. (13 de dezembro de 2023). «Biophosphorescence in fluorescent millipedes (Diplopoda: Xystodesmidae) and its relationships with bioluminescence». Scientific Reports (em inglês). 13 (1). ISSN 2045-2322. PMC 10719341. PMID 38092798. doi:10.1038/s41598-023-47860-9

[wucherer-31] 1 2 3 4 Wucherer, M. F.; Michiels, N. K. (2012). «A Fluorescent Chromatophore Changes the Level of Fluorescence in a Reef Fish». PLOS ONE. 7 (6). Bibcode:2012PLoSO...737913W. PMC 3368913. PMID 22701587. doi:10.1371/journal.pone.0037913 Parâmetro desconhecido |número-artigo= ignorado (ajuda)

[32] Fujii, R (2000). «The regulation of motile activity in fish chromatophores». Pigment Cell Research. 13 (5): 300–19. PMID 11041206. doi:10.1034/j.1600-0749.2000.130502.x

[33] Abbott, F. S. (1973). «Endocrine Regulation of Pigmentation in Fish». Integrative and Comparative Biology. 13 (3): 885–894. doi:10.1093/icb/13.3.885

[sparks-34] 1 2 3 4 5 Sparks, J. S.; Schelly, R. C.; Smith, W. L.; Davis, M. P.; Tchernov, D.; Pieribone, V. A.; Gruber, D. F. (2014). Fontaneto, Diego, ed. «The Covert World of Fish Biofluorescence: A Phylogenetically Widespread and Phenotypically Variable Phenomenon». PLOS ONE. 9 (1). Bibcode:2014PLoSO...983259S. PMC 3885428. PMID 24421880. doi:10.1371/journal.pone.0083259 Parâmetro desconhecido |número-artigo= ignorado (ajuda)

[Biology_of_underwater_fluorescence-35] 1 2 Beyer, Steffen. «Biology of underwater fluorescence». Fluopedia.org. Consultado em 19 de janeiro de 2022. Cópia arquivada em 30 de julho de 2020

[HaddockDunn2015-36] Haddock, S. H. D.; Dunn, C. W. (2015). «Fluorescent proteins function as a prey attractant: experimental evidence from the hydromedusa Olindias formosus and other marine organisms». Biology Open. 4 (9): 1094–1104. ISSN 2046-6390. PMC 4582119. PMID 26231627. doi:10.1242/bio.012138

[Mazel2017-37] Mazel, Charles (2017). «Method for Determining the Contribution of Fluorescence to an Optical Signature, with Implications for Postulating a Visual Function». Frontiers in Marine Science. 4. Bibcode:2017FrMaS...4..266M. ISSN 2296-7745. doi:10.3389/fmars.2017.00266 Parâmetro desconhecido |número-artigo= ignorado (ajuda)

[38] Matz, M. «Fluorescence: The Secret Color of the Deep». Office of Ocean Exploration and Research, U.S. National Oceanic and Atmospheric Administration. Cópia arquivada em 31 de outubro de 2014

[Heinermann-39] 1 2 Heinermann, P (10 de março de 2014). «Yellow intraocular filters in fishes». Experimental Biology. 43 (2): 127–147. PMID 6398222

[michiels-40] 1 2 3 4 5 Michiels, N. K.; Anthes, N.; Hart, N. S.; Herler, J. R.; Meixner, A. J.; Schleifenbaum, F.; Schulte, G.; Siebeck, U. E.; Sprenger, D.; Wucherer, M. F. (2008). «Red fluorescence in reef fish: A novel signalling mechanism?». BMC Ecology. 8 (1): 16. Bibcode:2008BMCE....8...16M. PMC 2567963. PMID 18796150. doi:10.1186/1472-6785-8-16

[gerlach-41] Gerlach, T; Sprenger, D; Michiels, N. K. (2014). «Fairy wrasses perceive and respond to their deep red fluorescent coloration». Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 281 (1787). Bibcode:2014PBioS.28140787G. PMC 4071555. PMID 24870049. doi:10.1098/rspb.2014.0787 Parâmetro desconhecido |número-artigo= ignorado (ajuda)

[42] Park, Hyun Bong; Lam, Yick Chong; Gaffney, Jean P.; Weaver, James C.; Krivoshik, Sara Rose; Hamchand, Randy; Pieribone, Vincent; Gruber, David F.; Crawford, Jason M. (27 de setembro de 2019). «Bright Green Biofluorescence in Sharks Derives from Bromo-Kynurenine Metabolism». iScience (em inglês). 19: 1291–1336. Bibcode:2019iSci...19.1291P. ISSN 2589-0042. PMC 6831821. PMID 31402257. doi:10.1016/j.isci.2019.07.019

[43] Salih, A.; Larkum, A.; Cox, G.; Kühl, M.; Hoegh-Guldberg, O. (2000). «Fluorescent pigments in corals are photoprotective». Nature. 408 (6814): 850–3. Bibcode:2000Natur.408..850S. PMID 11130722. doi:10.1038/35048564. Cópia arquivada em 22 de dezembro de 2015

[44] Roth, M. S.; Latz, M. I.; Goericke, R.; Deheyn, D. D. (2010). «Green fluorescent protein regulation in the coral Acropora yongei during photoacclimation». Journal of Experimental Biology. 213 (21): 3644–3655. Bibcode:2010JExpB.213.3644R. PMID 20952612. doi:10.1242/jeb.040881

[45] Bou-Abdallah, F.; Chasteen, N. D.; Lesser, M. P. (2006). «Quenching of superoxide radicals by green fluorescent protein». Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects. 1760 (11): 1690–1695. PMC 1764454. PMID 17023114. doi:10.1016/j.bbagen.2006.08.014

[46] Field, S. F.; Bulina, M. Y.; Kelmanson, I. V.; Bielawski, J. P.; Matz, M. V. (2006). «Adaptive Evolution of Multicolored Fluorescent Proteins in Reef-Building Corals». Journal of Molecular Evolution. 62 (3): 332–339. Bibcode:2006JMolE..62..332F. PMID 16474984. doi:10.1007/s00239-005-0129-9

[47] Mäthger, L. M.; Denton, E. J. (2001). «Reflective properties of iridophores and fluorescent 'eyespots' in the loliginid squid Alloteuthis subulata and Loligo vulgaris». The Journal of Experimental Biology. 204 (Pt 12): 2103–18. Bibcode:2001JExpB.204.2103M. PMID 11441052. doi:10.1242/jeb.204.12.2103. Cópia arquivada em 4 de março de 2016

[48] Tsien, R. Y. (1998). «The Green Fluorescent Protein». Annual Review of Biochemistry. 67: 509–544. PMID 9759496. doi:10.1146/annurev.biochem.67.1.509

[49] Mazel, C. H. (2004). «Fluorescent Enhancement of Signaling in a Mantis Shrimp». Science. 303 (5654): 51. Bibcode:2004Sci...303...51M. PMID 14615546. doi:10.1126/science.1089803

[50] Bou-Abdallah, F.; Chasteen, N. D.; Lesser, M. P. (2006). «Quenching of superoxide radicals by green fluorescent protein». Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects. 1760 (11): 1690–1695. PMC 1764454. PMID 17023114. doi:10.1016/j.bbagen.2006.08.014

[51] Douglas, R. H.; Partridge, J. C.; Dulai, K.; Hunt, D.; Mullineaux, C. W.; Tauber, A. Y.; Hynninen, P. H. (1998). «Dragon fish see using chlorophyll». Nature. 393 (6684): 423–424. Bibcode:1998Natur.393..423D. doi:10.1038/30871

[Lamb2020-52] 1 2 Lamb, J.Y.; M.P. Davis (2020). «Salamanders and other amphibians are aglow with biofluorescence». Scientific Reports. 10 (1): 2821. Bibcode:2020NatSR..10.2821L. PMC 7046780. PMID 32108141. doi:10.1038/s41598-020-59528-9

[53] Wong, Sam (13 de março de 2017). «Luminous frog is the first known naturally fluorescent amphibian». Consultado em 22 de março de 2017. Cópia arquivada em 20 de março de 2017

[54] King, Anthony (13 de março de 2017). «Fluorescent frog first down to new molecule». Consultado em 22 de março de 2017. Cópia arquivada em 22 de março de 2017

[Taboada2017-55] Taboada, C.; A.E. Brunetti; C. Alexandre; M.G. Lagorio; J. Faivovich (2017). «Fluorescent Frogs: A Herpetological Perspective». South American Journal of Herpetology. 12 (1): 1–13. doi:10.2994/SAJH-D-17-00029.1. hdl:11336/48638

[Goutte2019-56] 1 2 Sandra Goutte; Matthew J. Mason; Marta M. Antoniazzi; Carlos Jared; Didier Merle; Lilian Cazes; Luís Felipe Toledo; Hanane el-Hafci; Stéphane Pallu; Hugues Portier; Stefan Schramm; Pierre Gueriau; Mathieu Thoury (2019). «Intense bone fluorescence reveals hidden patterns in pumpkin toadlets». Scientific Reports. 9 (1): 5388. Bibcode:2019NatSR...9.5388G. PMC 6441030. PMID 30926879. doi:10.1038/s41598-019-41959-8

[Fox2019-57] Fox, A. (2 de abril de 2019). «Scientists discover a frog with glowing bones». ScienceMag. Consultado em 9 de fevereiro de 2020. Cópia arquivada em 8 de março de 2020

[Reboucas2019-58] Rebouças, R.; A.B. Carollo; M.d.O. Freitas; C. Lambertini; R.M. Nogueira dos Santos; L.F. Toledo (2019). «Conservation Status of Brachycephalus Toadlets (Anura: Brachycephalidae) from the Brazilian Atlantic Rainforest». Diversity. 55 (1): 39–47. Bibcode:2019Diver..11..150B. doi:10.3390/d11090150. hdl:11449/188070

[59] Vukusic, P; Hooper, I (2005). «Directionally controlled fluorescence emission in butterflies». Science. 310 (5751): 1151. PMID 16293753. doi:10.1126/science.1116612

[60] Arnold, K. E. (2002). «Fluorescent Signaling in Parrots». Science. 295 (5552): 92. PMID 11778040. doi:10.1126/science.295.5552.92

[Andrews-Reed-Masta-2007-61] 1 2 Andrews, K.; Reed, S.M.; Masta, S.E. (2007). «Spiders fluoresce variably across many taxa». Biology Letters. 3 (3): 265–267. Bibcode:2007BiLet...3..265A. PMC 2104643. PMID 17412670. doi:10.1098/rsbl.2007.0016

[Stachel-Stockwell-vanVranken-1999-62] Stachel, S.J.; Stockwell, S.A.; van Vranken, D.L. (1999). «The fluorescence of scorpions and cataractogenesis». Chemistry & Biology. 6 (8): 531–539. PMID 10421760. doi:10.1016/S1074-5521(99)80085-4

[63] Spaeth, P. (2020). «Biofluorescence in the platypus (Ornithorhynchus anatinus)». Mammalia. 85 (2): 179–181. doi:10.1515/mammalia-2020-0027

[64] Anich, Paula Spaeth; Martin, Jonathan G.; Olson, Erik R.; Kohler, Allison M. (2019). «Ultraviolet fluorescence discovered in New World flying squirrels (Glaucomys)». Journal of Mammalogy (em inglês). 100: 21–30. doi:10.1093/jmammal/gyy177

[65] Nicolaï, Michaël P. J.; Bok, Michael J.; Abalos, Javier; D'Alba, Liliana; Shawkey, Matthew D.; Goldenberg, Jonathan (11 de junho de 2024). «The function and consequences of fluorescence in tetrapods». Proceedings of the National Academy of Sciences (em inglês). 121 (24). Bibcode:2024PNAS..12118189N. ISSN 0027-8424. PMC 11181051. PMID 38814876. doi:10.1073/pnas.2318189121 Parâmetro desconhecido |número-artigo= ignorado (ajuda)

[66] McDonald, Maurice S. (2 de junho de 2003). Photobiology of Higher Plants (em inglês). [S.l.]: John Wiley & Sons. ISBN 978-0-470-85523-2. Cópia arquivada em 21 de dezembro de 2017

[67] «5.1 Chlorophyll fluorescence – ClimEx Handbook» (em inglês). Consultado em 14 de janeiro de 2020. Cópia arquivada em 14 de janeiro de 2020

[68] Iriel, A. A.; Lagorio, M. A. G. (2010). «Is the flower fluorescence relevant in biocommunication?». Naturwissenschaften. 97 (10): 915–924. Bibcode:2010NW.....97..915I. PMID 20811871. doi:10.1007/s00114-010-0709-4

[69] Tamizi, Amin Asyaf; Shakri, Mohamad Alias; Mat-Amin, Noriha (2025). «A natural hybrid of the carnivorous plant Nepenthes benstonei × rafflesiana (Nepenthaceae) emits vivid green autofluorescence: the first report for the genus». Tropical Ecology. 41: 1–9. doi:10.1017/S0266467425100345. Consultado em 30 de março de 2026

[70] Kurup, R.; Johnson, A. J.; Sankar, S.; Hussain, A. A.; Sathish Kumar, C.; Sabulal, B. (5 de fevereiro de 2013). «Fluorescent prey traps in carnivorous plants». Plant Biology. 15 (3): 611–615. doi:10.1111/j.1438-8677.2012.00709.x. Consultado em 30 de março de 2026

[71] Raman, C.V. (1962). "The luminescence of fluorspar". Curr. Sci., 31, 361–365.

[Mobed_1966-72] Mobed, Jarafshan J.; Hemmingsen, Sherry L.; Autry, Jennifer L.; McGown, Linda B. (1 de setembro de 1996). «Fluorescence characterization of IHSS humic substances: Total luminescence spectra with absorbance correction». Environmental Science & Technology. 30 (10): 3061–3065. Bibcode:1996EnST...30.3061M. ISSN 0013-936X. doi:10.1021/es960132l

[Milori_2002-73] Milori, Débora MBP; Martin-Neto, Ladislau; Bayer, Cimélio; Mielniczuk, João; Bagnato, Vanderlei S (2002). «Humification degree of soil humic acids determined by fluorescence spectroscopy». Soil Science. 167 (11): 739–749. Bibcode:2002SoilS.167..739M. ISSN 0038-075X. doi:10.1097/00010694-200211000-00004

[Richard_2004-74] Richard, C; Trubetskaya, O; Trubetskoj, O; Reznikova, O; Afanas' Eva, G; Aguer, J-P; Guyot, G (2004). «Key role of the low molecular size fraction of soil humic acids for fluorescence and photoinductive activity». Environmental Science & Technology. 38 (7): 2052–2057. Bibcode:2004EnST...38.2052R. ISSN 0013-936X. PMID 15112806. doi:10.1021/es030049f

[Sierra_2005-75] Sierra, MMD; Giovanela, M; Parlanti, E; Soriano-Sierra, EJ (2005). «Fluorescence fingerprint of fulvic and humic acids from varied origins as viewed by single-scan and excitation/emission matrix techniques». Chemosphere. 58 (6): 715–733. Bibcode:2005Chmsp..58..715S. ISSN 0045-6535. PMID 15621185. doi:10.1016/j.chemosphere.2004.09.038

[76] Dramićanin, Tatjana; Zeković, Ivana; Periša, Jovana; Dramićanin, Miroslav D. (2019). «The Parallel Factor Analysis of Beer Fluorescence». Journal of Fluorescence. 29 (5): 1103–1111. PMID 31396828. doi:10.1007/s10895-019-02421-0

[77] Birks, J. B. (1962). «The Fluorescence and Scintillation Decay Times of Crystalline Anthracene». Proceedings of the Physical Society. 79 (3): 494–496. Bibcode:1962PPS....79..494B. doi:10.1088/0370-1328/79/3/306

[gilmore1992-78] Gilmore, F. R.; Laher, R. R.; Espy, P. J. (1992). «Franck–Condon Factors, r-Centroids, Electronic Transition Moments, and Einstein Coefficients for Many Nitrogen and Oxygen Band Systems». Journal of Physical and Chemical Reference Data. 21 (5): 1005. Bibcode:1992JPCRD..21.1005G. doi:10.1063/1.555910. Cópia arquivada em 9 de julho de 2017

[79] «Chemists create the brightest-ever fluorescent materials». phys.org (em inglês). Consultado em 6 de setembro de 2020. Cópia arquivada em 3 de setembro de 2020

[80] «Scientists create the brightest fluorescent materials in existence». New Atlas. 7 de agosto de 2020. Consultado em 6 de setembro de 2020. Cópia arquivada em 13 de setembro de 2020

[81] «Scientists create 'brightest known materials in existence'». independent.co.uk (em inglês). Consultado em 6 de setembro de 2020. Cópia arquivada em 25 de setembro de 2020

[82] Benson, Christopher R.; Kacenauskaite, Laura; VanDenburgh, Katherine L.; Zhao, Wei; Qiao, Bo; Sadhukhan, Tumpa; Pink, Maren; Chen, Junsheng; Borgi, Sina; Chen, Chun-Hsing; Davis, Brad J.; Simon, Yoan C.; Raghavachari, Krishnan; Laursen, Bo W.; Flood, Amar H. (6 de agosto de 2020). «Plug-and-Play Optical Materials from Fluorescent Dyes and Macrocycles». Chem (em inglês). 6 (8): 1978–1997. Bibcode:2020Chem....6.1978B. ISSN 2451-9294. doi:10.1016/j.chempr.2020.06.029

[How_Fluorescent_Lamps_Work-83] 1 2 Harris, Tom (7 de dezembro de 2001). «How Fluorescent Lamps Work». HowStuffWorks. Discovery Communications. Consultado em 27 de junho de 2010. Cópia arquivada em 6 de julho de 2010

[84] Flesch, P. (2006). Light and light sources: high-intensity discharge lamps. Berlim: Springer-Verlag. ISBN 978-3-540-32685-4. OCLC 262693002

[85] Chen, Lei; Lin, Chun-Che; Yeh, Chiao-Wen; Liu, Ru-Shi (22 de março de 2010). «Light Converting Inorganic Phosphors for White Light-Emitting Diodes». Materials. 3 (3): 2172–2195. Bibcode:2010Mate....3.2172C. ISSN 1996-1944. PMC 5445896. doi:10.3390/ma3032172

[86] Rye, H. S.; Dabora, J. M.; Quesada, M. A.; Mathies, R. A.; Glazer, A. N. (1993). «Fluorometric Assay Using Dimeric Dyes for Double- and Single-Stranded DNA and RNA with Picogram Sensitivity». Analytical Biochemistry. 208 (1): 144–150. Bibcode:1993AnBio.208..144R. PMID 7679561. doi:10.1006/abio.1993.1020

[87] Harris, Daniel C. (2004). Exploring chemical analysis. [S.l.]: Macmillan. ISBN 978-0-7167-0571-0. Cópia arquivada em 31 de julho de 2016

[88] Katayama, Seiji. Fundamental and Details of Laser Welding. Springer, 2020, p. 3–5.

[pmid20210433-89] Calfon MA, Vinegoni C, Ntziachristos V, Jaffer FA (2010). «Intravascular near-infrared fluorescence molecular imaging of atherosclerosis: toward coronary arterial visualization of biologically high-risk plaques.». J Biomed Opt. 15 (1): 011107–011107–6. Bibcode:2010JBO....15a1107C. PMC 3188610. PMID 20210433. doi:10.1117/1.3280282

[pmid26971006-90] Ughi GJ, Wang H, Gerbaud E, Gardecki JA, Fard AM, Hamidi E et al. (2016). «Clinical Characterization of Coronary Atherosclerosis With Dual-Modality OCT and Near-Infrared Autofluorescence Imaging». JACC Cardiovasc Imaging. 9 (11): 1304–1314. PMC 5010789. PMID 26971006. doi:10.1016/j.jcmg.2015.11.020

[pmid26685129-91] Hara T, Ughi GJ, McCarthy JR, Erdem SS, Mauskapf A, Lyon SC et al. (2015). «Intravascular fibrin molecular imaging improves the detection of unhealed stents assessed by optical coherence tomography in vivo». Eur Heart J. 38 (6): 447–455. PMC 5837565. PMID 26685129. doi:10.1093/eurheartj/ehv677

[92] Shkolnikov, V; Santiago, J. G. (2013). «A method for non-invasive full-field imaging and quantification of chemical species» (PDF). Lab on a Chip. 13 (8): 1632–43. PMID 23463253. doi:10.1039/c3lc41293h. Cópia arquivada (PDF) em 5 de março de 2016

[Moczko2016-93] Moczko, E; Mirkes, EM; Cáceres, C; Gorban, AN; Piletsky, S (2016). «Fluorescence-based assay as a new screening tool for toxic chemicals». Scientific Reports. 6. Bibcode:2016NatSR...633922M. PMC 5031998. PMID 27653274. doi:10.1038/srep33922 Parâmetro desconhecido |número-artigo= ignorado (ajuda)

[94] Smith, W. Leo; Buck, Chesney A.; Ornay, Gregory S.; Davis, Matthew P.; Martin, Rene P.; Gibson, Sarah Z.; Girard, Matthew G. (20 de agosto de 2018). «Improving Vertebrate Skeleton Images: Fluorescence and the Non-Permanent Mounting of Cleared-and-Stained Specimens». Copeia (em inglês). 106 (3): 427–435. ISSN 0045-8511. doi:10.1643/cg-18-047

[95] Hawkins, H. Gene; Carlson, Paul John; Elmquist, Michael (2000). "Evaluation of fluorescent orange signs". Texas Transportation Institute Report 2962-S. Arquivado em 4 de março de 2016.

[1]

[2]

[3]

[4]

[5]

[6]

[7]

[8]

[9]

[10]

[11]

[12]

[13]

[14]

[15]

[16]

[17]

[18]

[19]

[20]

[21]

[22]

[23]

[24]

[25]

[26]

[27]

[28]

[29]

[30]

[31]

[32]

[33]

[34]

[35]

[36]

[37]

[38]

[39]

[40]

[41]

[42]

[43]

[44]

[45]

[46]

[47]

[48]

[49]

[50]

[51]

[52]

[53]

[54]

[55]

[56]

[57]

[58]

[59]

[60]

[61]

[62]

[63]

[64]

[65]

[66]

[67]

[68]

[69]

[70]

[71]

[72]

[73]

[74]

[75]

[76]

[77]

[78]

[79]

[80]

[81]

[82]

[83]

[84]

[85]

[86]

[87]

[88]

[89]

[90]

[91]

[92]

[93]

[94]

[95]

v d e Lâmpadas e iluminação
Incandescente	Regular · Halogéneo · Reflector parabólico aluminizado (PAR) · Nernst · Photoflood
Fluorescente	Fluorescente · Fluorescente compacta · Indução fluorescente
Lâmpadas de descarga	Vapor de mercúrio · Halogenetos metálicos · Vapor de sódio
Descarga em gás	Arco de deutério · Néon · Enxofre · Arco de xénon · Flash de xénon · Luz negra · Lâmpada bronzeadora · Germicida · Luz de crescimento · Estroboscópio
Arco eléctrico	Arco de carbono · Lâmpada Yablochkov
Combustão	Acetileno/Carbeto · Argand · Vela · Diya · Gás · Querosene · Lampião · Luminária Drummond · Óleo · Segurança · Rushlight · Tilley · Tocha
Outros	LED · lanterna · Estado sólido · Plasma · Fio electroluminescente · Quimioluminescência · Radioluminescência · Glow stick · Luminescência opticamente estimulada · Polímero eletroluminescente induzido por campo elétrico

v d e Óptica
Ramos	Óptica geométrica Óptica ondulatória Óptica quântica Óptica não linear Fotônica Engenharia óptica
Propagação	Luz Velocidade da luz Reflexão Refração Lei de Snell Princípio de Fermat Princípio de Huygens Difração Interferência Dispersão (óptica) Espalhamento Polarização Birrefringência Fóton balístico
Instrumentos e componentes	Lente Espelho Prisma Microscópio Telescópio Interferômetro Espectrômetro Laser Fibra óptica Pinça óptica
Luz e visão	Raio luminoso Espectro visível Cor Visão Fotometria Radiometria Espectroscopia Coerência (física) Fluorescência Fosforescência Lista de fontes de luz
Fenômenos naturais	Arco-íris Halo (fenômeno óptico) Parélio Miragem Raio verde Glória (fenômeno óptico)
História	História da óptica Alhazém Isaac Newton Christiaan Huygens Thomas Young Augustin Jean Fresnel Joseph von Fraunhofer Lord Rayleigh Chandrasekhara Venkata Raman
Publicações e divulgação	Journal of Luminescence Luminescence: The Journal of Biological and Chemical Luminescence Light Fantastic